Изучена зависимость соотношения лейкоцитов периферической крови и иммунокомпетентных органов леща Abramis brama L., обитающего в Иваньковском водохранилище, от длины, массы, пола и возраста рыбы. В мазках дифференцированы характерные для вида типы клеток: лимфоциты, моноциты/макрофаги, нейтро- и эозинофилы, бластные клетки. Распределение индивидуальных значений форм лейкоцитов для каждого органа имело нормальный характер по критерию хи-квадрат с левосторонней (лимфоциты) и правосторонней асимметрией (нейтрофилы, эозинофилы и бластные клетки). Количество форм лейкоцитов не коррелировало с длиной, массой и возрастом рыб. Различия между самцами и самками наиболее выражены в составе лейкоцитов головной почки: у самцов наблюдалось большее содержание моноцитов, нейтрофилов и эозинофилов, меньшее бластных клеток. В селезенке у самок относительное содержание нейтрофилов и эозинофилов больше, чем у самцов.
лещ Abramis brama, периферическая кровь, пронефрос, селезенка, лейкоциты, Иваньковское водохранилище
1. Андреева А.М. Оогенез леща Abramis brama (L.) (Cyprinidae) Рыбинского водохранилища // Вопр. ихтиологии. 1983. Т. 23. Вып. 2. С. 257–261.
2. Атлас пресноводных рыб России. Т. 1. М.: Наука, 2002. 379 с.
3. Басова М.М. Лейкоцитарная формула морского ерша Scorpaena porcus как биомаркер антропогенного загрязнения прибрежных вод Черного моря // Вопр. ихтиологии. 2017. Т. 57, № 3. С. 347–352. DOI:https://doi.org/10.7868/S004287521703002X.
4. Бреховских В.Ф., Казмирук Т.Н., Казмирук В.Д. Донные отложения Иваньковского водохранилища: состояние, состав, свойства. М.: Наука, 2006. 176 с.
5. Головина Н.А., Тромбицкий И.Д. Гематология прудовых рыб. Кишинев: Штиинца, 1989. 155 с.
6. Гордеев И.И., Балабанова Л.В., Суворова Т.А. и др. Состав лейкоцитов периферической крови и иммунокомпетентных органов белого гольца озера Кроноцкое (Камчатка) // Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2021. № 9(188). С. 42–49. DOI:https://doi.org/10.33920/sel-09-2109-04.
7. Горячев Д.В., Никитенко А.И., Клец Н.Н. и др. Состояние запасов водных биологических ресурсов Иваньковского и Угличского водохранилищ // Вопр. рыболовства. 2021. Т. 22, № 1. С. 25–37. DOI:https://doi.org/10.36038/0234-2774-2021-22-1-25-37.
8. Григорьева И.Л., Комиссаров А.Б., Чекмарева Е.А. Современное состояние, источники загрязнения и возможные пути реабилитации Иваньковского водохранилища и его притоков // Научные проблемы оздоровления российских рек и пути их решения: Сборник научных трудов, Нижний Новгород, 08–14 сентября 2019 г. Нижний Новгород: Студия Ф1, 2019. С. 332–336.
9. Житенева Л.Д., Полтавцева Т.Г., Рудницкая О.А. Атлас нормальных и патологически измененных клеток крови рыб: справочник. Ростов-на-Дону: Ростовское книжное издательство, 1989. 112 с.
10. Житенева Т.С. Особенности экологии леща Abramis brama L. на этапах и переходных периодах развития в связи с проблемой его роста в Иваньковском водохранилище // Биол. внутр. вод. 1998. № 1. С. 55–61.
11. Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб. М.: Лег. и пищ. пром-сть, 1983. 184 с.
12. Иваньковское водохранилище и его жизнь (под ред. Н.В. Буторина). Л.: Наука, 1978. 304 с.
13. Кейстер И.А. Динамика показателей крови рыб как показатель состояния ихтиофауны Белого озера (Вологодская область) // Журн. науч. публикаций аспирантов и докторантов. 2007. № 12 (http://jurnal.org/articles/2007/bio6.html.Version 03/2022).
14. Ковалева М.П. Техника промышленного рыболовства на Иваньковском водохранилище // Изв. ГосНИОРХ. 1964. Т. 56. С. 42–70.
15. Корнева Л.Г., Соловьева В.В., Макарова О.С. и др. Распределение планктона в волжских водохранилищах летом 2015 г. // Труды Института биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН. 2018. Вып. 82(85). С. 21–27. DOI:https://doi.org/10.24411/0320-3557-2018-1-0010.
16. Кузина Т.В. Цитофизиологические особенности крови промысловых рыб Волго-Каспийского канала. Автореф. дисс. … канд. биол. наук. Астрахань, 2011. 25 с.
17. Лапирова Т.Б., Заботкина Е.А. Сравнительный анализ показателей иммунофизиологического состояния леща Abramis brama (L.) из различных по степени загрязнения участков Рыбинского водохранилища // Биол. внутр. вод. 2010. № 2. С. 86–91. DOI:https://doi.org/10.1134/S1995082910020136.
18. Лапирова Т.Б., Флерова Е.А. Физиолого-биохимическая характеристика крови леща (Abramis brama L.) Рыбинского водохранилища // Вестник Мичуринского ГАУ. 2015. № 2. С. 83–88.
19. Микряков В.Р., Балабанова Л.В. Основы клеточного иммунитета у рыб // Физиология и паразитология пресноводных животных. Л.: Наука, 1979. С. 105–124.
20. Микряков В.Р., Балабанова Л.В., Заботкина Е.А. и др. Реакция иммунной системы рыб на загрязнение воды токсикантами и закисление среды. М.: Наука, 2001. 126 с.
21. Микряков В.Р., Лапирова Т.Б. Влияние солей некоторых тяжелых металлов на состав белой крови молоди ленского осетра Acipenser baeri // Вопр. ихтиологии. 1997. Т. 37, № 4. С. 538–542.
22. Микряков В.Р., Терещенко В.Г., Микряков Д.В. Опыт применения интегрального индекса для оценки дестабилизационных процессов в иммунной системе рыб // Биол. внутр. вод. 2021. № 3. С. 311–320. DOI:https://doi.org/10.31857/S0320965221030104.
23. Минеева Н.М., Семадени И.В., Соловьева В.В., Макарова О.С. Содержание хлорофилла и современное трофическое состояние водохранилищ р. Волги (2019–2020 гг.) // Биол. внутр. вод. 2022. № 4. С. 367–371. DOI:https://doi.org/10.31857/S0320965222040210.
24. Никаноров Ю.И. Иваньковское и Угличское водохранилище // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ. 1984. Вып. 210. С. 4–12.
25. Перова С.Н., Пряничникова Е.Г., Жгарева Н.Н., Зубишина А.А. Таксономический состав и обилие макрозообентоса волжских водохранилищ // Труды Института биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН. 2018. Вып. 82(85). С. 52–66. DOI:https://doi.org/10.24411/0320-3557-2018-1-0012.
26. Петров Р.В. Иммунология. М.: Медицина, 1987. 416 с.
27. Савина Л.В. Использование гематологических показателей рыб для оценки новой кормовой добавки МИК БАК и экологического состояния естественных водоемов. Автореф. дисс. … канд. биол. наук. Калининград, 2004. 24 с.
28. Сакун О.Ф., Буцкая Н.А. Определение стадий зрелости и изучение половых циклов рыб. М.: Рыбное хозяйство, 1963. 35 с.
29. Саппо Г.Б. Биология, запасы леща Иваньковского водохранилища и влияние на них сбросных вод Конаковской ГРЭС. Автореф. дисс. ... канд. биол. наук. Ленинград, 1976. 25 с.
30. Светашева Д.Р., Грушко М.П., Нгуен Т.Х.В. Развитие и функциональная организация центральных органов гемопоэза личинок леща обыкновенного (Abramis brama (L.)) // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. 2019. № 3. С. 125–131. DOI:https://doi.org/10.24143/2073-5529-2019-3-125-131.
31. Серпунин Г.Г. Гематологические показатели адаптаций рыб. Автореф. дис. ... докт. биол. наук. Калининград, 2002. 49 с.
32. Суворова Т.А., Пронина Г.И., Микряков Д.В. Состав лейкоцитов периферической крови и иммунокомпетентных органов кросса карпа “Петровский” в разные периоды рыбоводного сезона // Рыбоводство и рыб. хоз-во. 2021. № 1. С. 58–68. DOI:https://doi.org/10.33920/sel-09-2101-05.
33. Хаитов Р.М., Игнатьева Г.А., Сидорович И.Г. Иммунология: Учебник. М.: Медицина, 2002. 536 с.
34. Экологические проблемы Верхней Волги (под ред. Копылова А.И.). Ярославль: ЯГТУ, 2001. 427 с.
35. Юрова О.В., Сударев Н.П. Природное и антропогенное влияние на популяцию леща в Иваньковском водохранилище // Аграрный вестник Верхневолжья. 2022. № 2(39). С. 79–85. DOI:https://doi.org/10.35523/2307-5872-2022-39-2-79-85.
36. Ellis A.E. Ontogeny of the Immune System in Teleost Fish // Fish Vaccination. 1988. P. 20–31.
37. Fänge R., Nilsson S. The fish spleen: structure and function // Experimentia. 1985. Vol. 41, № 2. P. 152–158.
38. Fazio F., Lanteri G., Saoca C. et al. Individual variability of blood parameters in striped bass Morones axatilis: possible differences related to weight and length // Aquaculture International. 2020. Vol. 28. P. 1665–1673. DOI:https://doi.org/10.1007/s10499-020-00550-z.
39. Hamdani S.H., McMillan D.N., Pettersen E.F. et al. Isolation of rainbow trout neutrophils with an anti-granulocyte monoclonal antibody // Vet. Immunol. Immunopathol. 1998. Vol. 63. P. 369–380.
40. Havixbeck J.J., Rieger A.M., Wong M.E. et al. Neutrophil contributions to the induction and regulation of the acute inflammatory response in teleost fish // J. Leukoc. Biol. 2016. Vol. 99, № 2. P. 241–252. DOI:https://doi.org/10.1189/jlb.3HI0215-064R.
41. Karim B., Yousria G., Wyllia Kh. Influence of total length, sex and seasonal variations on hematological parameters in Cyprinus carpio (Linnaeus, 1758) (Pisces Cyprinidae) in Lake Tonga (Algeria) // Biodivers. J. 2019. Vol. 10(4). P. 593–600. DOI:https://doi.org/10.31396/Biodiv.Jour.2019.10.4.593.600.
42. Katzenback B.A., Belosevic M. Isolation and functional characterization of neutrophil-like cells, from goldfish (Carassius auratus L.) kidney // Dev. Comp. Immunol. 2009. Vol. 33, № 4. P. 601–611. DOI:https://doi.org/10.1016/j.dci.2008.10.011.
43. Kostić‑Vuković J., Kolarević S., Kračun‑Kolarević·M. et al. Temporal variation of biomarkers in common bream Abramis brama (L., 1758) exposed to untreated municipalwastewater in the Danube River in Belgrade, Serbia // Environ. Monit. Assess. 2021. Vol. 193(8). P. 465. DOI:https://doi.org/10.1007/s10661-021-09232-6.
44. Križanac S., Topi´cPopovi´c N., Bariši´c J. et al. Comparative Study of Physiological Changes in Turbot Scophthalmus maximus in Different Living Conditions // Appl. Sci. 2022. Vol. 12(9). P. 4201. DOI:https://doi.org/10.3390/app12094201.
45. Lamkova K., Simkova A., Palikova M. et al. Seasonal changes of immunocompetence and parasitism in chub (Leuciscus cephalus), a freshwater cyprinid fish // Parasitol. Res. 2007. Vol. 101. P. 775–789. DOI:https://doi.org/10.1007/s00436-007-0546-3.
46. Lapirova T.B., Zabotkina E.A. Effect of trypanosomiasis on hematologic characteristics of bream (Abramis brama) // Regul. Mech. Biosyst. 2018. Vol. 8(3). P. 309–314. DOI:https://doi.org/10.15421/021845.
47. Modra H., Svobodova Z., Kolafova I. Comparison of Differential Leukocyte Counts in Fish of Economic and Indicator Importance // Acta Vet. Brno. 1998. Vol. 67. P. 215–226. DOI:https://doi.org/10.2754/avb199867040215.
48. Noga E.J. Spleen, thymus, reticulo-endothelial system, blood // Systemic pathology of fish. A text and atlas of normal tissues in teleosts and their responses in disease. London: Scotian Press. 2006. 121 p.
49. Parish N., Wrathmell A., Hart S., Harris J. The leucocytes of the elasmobranch Scyliorhinus vanicula L. A morphological study // J. Fish. Biol. 1986. Vol. 28, № 5. P. 545–561. DOI:https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1986.tb05192.x.
50. Pavlidis M., Futter W.C., Kathario P., Divanach P. Blood cells of six Mediterranean mariculture fish species // J. Appl. Ichthyology. 2007. Vol. 23. P. 70–73. DOI:https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2006.00771x.
51. Rey Vazquez G., Guerrero G.A. Characterization of blood cells and hematological parameters in Cichlasoma dimerus (Teleostei, Perciformes) // Tissue Cell. 2007. Vol. 39. P. 151–160. DOI:https://doi.org/10.1016/j.tice.2007.02.004.
52. Samai H.C., Rioult D., Bado-Nilles A. et al. Procedures for leukocytes isolation from lymphoid tissues and consequences on immune endpointsused to evaluate fish immune status: A case study on roach (Rutilus rutilus) // Fish and Shellfish Immunol. 2018. Vol. 74. P. 643–657. DOI:https://doi.org/10.1016/j.fsi.2017.12.040.
53. Sasaki Y., Maita M., Okamoto N. Rainbow trout neutrophils are responsible for non-specific cytotoxicity // Fish Shellfish Immunol. 2002. Vol. 14. P. 243–252. DOI:https://doi.org/10.3390/biology4040715.
54. Scapigliati G. Functional aspects of fish lymphocytes // Dev. Comp. Immunol. 2013. Vol. 41, № 2. P. 200–208. DOI:https://doi.org/10.1016/j.dci.2013.05.012.
55. Smith C.R., Ottinger C.A., Walsh H.L., Blazer V.S. Development of a suite of functional immune assays and initial assessment of their utility in wild smallmouth bass health assessments. Reston: U.S. Geological Survey, 2020. Open-File Report 2020–1077. 23 p. DOI:https://doi.org/10.3133/ofr20201077.
56. Sueiro M.C., Awruch C., Gilardoni C. et al. Immunity and health of two wild marine fishes naturally exposed to anthropogenic pollution // Sci. Total Env. 2020. Vol. 726. P. 138–303. DOI:https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2020.138303.
57. Suvorova T.A., German A.V. Percentage of Leukocytes in Peripheral Blood, Head Kidney, and Spleen of the Abramis brama (Cyprinidae) Bream of the Upper Volga Reservoirs // J. Ichthyol. 2024. Vol. 64, № 2. P. 352–356. DOI:https://doi.org/10.1134/S0032945224020140.
58. Tenji D., Micic B., Sipos S. et al. Fish biomarkers from a different perspective: evidence of adaptive strategy of Abramis brama (L.) to chemical stress // Environ. Sci. Eur. 2020. Vol. 32, № 1. P. 38. DOI:https://doi.org/10.1186/s12302-020-00316-7.
59. Uribe C., Folch H., Enriquez R., Moran G. Innate and adaptive immunity in teleost fish: A review // Vet. Med. 2011. Vol. 56, № 10. P. 486–503. DOI:https://doi.org/10.17221/3294-VETMED.
60. Vainikka A., Jokinen E.I., Kortet R., Taskinen J. Gender- and season-dependent relationships between testosterone, oestradiol and immune function in wild roach // J. Fish Biol. 2004. Vol. 64. P. 227–240. DOI:https://doi.org/10.1046/j.1095-8649.2004.00306.x.
61. Yadav D.P., Banaijee V., Banaerjee M. Haematology of genus Channa: leucocytes // Comp. Physiol. Ecol. 1986. Vol. 11, № 4. P. 226–232.
62. Zapata A., Amemiya C.T. Phylogeny of Lower Vertebrates and Their Immunological Structures // Current Topics in Microbiology and Immunology Microbiology. 2000. Vol. 248. P. 67–107. DOI:https://doi.org/10.1007/978-3-642-59674-2_5.
63. Zapata A.G. Ultrastructural study of the teleost fish kidney // Develop. Comp. Immunol. 1979. №. 3. P. 55–65.
