Аннотация (русский):
В книге описаны основные подходы и методы изучения сообществ гидробионтов континентальных вод. Представлены принципы выбора станций, методы отбора проб планктона, бентоса и перифитона с учетом таксономического состава гидробионтов и типа водных объектов, порядок камеральной обработки и анализа данных. Кроме этого, нашли отражение методы изучения дрифта макробеспозвоночных, околоводных насекомых, определения мертвых особей зоопланктона, низкомолекулярного метаболома растений, описана организация экспериментальных исследований в микро- и мезокосмах, культивирование и проведение лабораторных экспериментов с ракообразными, а также перспективы модернизации гидробиологического оборудования. Книга рассчитана на широкий круг гидробиологов, преподавателей и студентов профильных специальностей высшей школы и средних специальных учебных заведений, сотрудников гидрометеорологической службы, рыбоводческих предприятий.

Ключевые слова:
методы, гидробиология, сообщества, планктон, бентос, перифитон, метаболом, эксперименты

1. Абакумов В.А., Качалова О.Л. Зообентос в системе контроля качества вод // Научн. основы контроля качества вод по гидробиологическим показателям. Тр. Всес. конф., Москва, 1–3 ноября, 1978 г. Л.: Гидрометеоиздат, 1981. С. 167–175.

2. Абросов В.Н. Зональные типы лимногенеза. Л.: Наука, 1982. 144 с.

3. Азовский А.И., Чертопруд М.В. Масштабно-ориентированный подход к анализу пространственной структуры сообществ // Журнал общей биологии. 1998. Т. 59. Вып. 2. С. 117–136.

4. Алекин О.А., Семенов А.Д., Скопинцев Б.А. Руководство по химическому анализу вод суши. Л.: Гидрометеоиздат, 1973. 270 с.

5. Александров Б.Г. Калорийность беспозвоночных Азовского моря // Экология моря. 2001. № 55. С. 5–10.

6. Александров С.В. Первичная продукция планктона в лагунах Балтийского моря (Вислинский и Куршский заливы). Калининград: АтлантНИРО, 2010. 228 с.

7. Алексеев В.А. Система токсобности и ее место в унифицированной системе качества вод СССР // Водные ресурсы. 1984. № 5. С. 76–87.

8. Алексеев В.Р. Диапауза ракообразных: Эколого-физиологические аспекты. М.: Наука, 1990. 144 с.

9. Алексеев В.Р. Значение диапаузы при акклиматизации ракообразных // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ. 1986. № 252. С. 621–631.

10. Алимов А.Ф. Функциональная экология пресноводных двустворчатых моллюсков // Тр. Зоол. ин-та АН СССР. Л.: Наука, 1981. Т. 96. 247 с.

11. Алимов А.Ф. Структурно-функциональный подход к изучению сообществ водных животных // V съезд Всесоюзного гидробиологического общества: тез. докл. Куйбышев, 1986. С. 132–133.

12. Алимов А.Ф. Введение в продукционную гидробиологию. Л.: Гидрометеоиздат, 1989. 147 с.

13. Алимов А.Ф. Основные положения теории функционирования водных экосистем // Гидробиол. журн. 1990. Т. 26, вып. 6. С. 3–12.

14. Алимов А.Ф. Элементы функционирования водных экосистем. СПб.: Наука, 2001. 147 с.

15. Алимов А.Ф., Богатов В.В., Голубков С.М. Продукционная гидробиология. СПб.: Наука, 2013. 342 с.

16. Алимов А.Ф., Финогенова Н.П. Количественная оценка роли сообществ донных животных в процессах самоочищения пресноводных водоемов // Гидробиологические основы самоочищения вод. Л.: Наука, 1976. С. 5–14.

17. Андроникова И.Н. Изменения в сообществе зоопланктона в связи с процессом эвтрофирования // Эвтрофирование мезотрофного озера. Л.: Наука, 1980. С. 78–99.

18. Андроникова И.Н. Использование структурно-функциональных показателей зоопланктона в системе мониторинга // Гидробиологические исследования морских и пресных вод. Л.: Наука, 1988. С. 47–53.

19. Андроникова И.Н. Основные итоги исследований ветвистоусых ракообразных гумифицированных водоемов // Современные проблемы изучения ветвистоусых ракообразных. СПб.: Гидрометеоиздат, 1992. С. 81–99.

20. Андроникова И.Н. Структурно-функциональная организация зоопланктона озерных экосистем. СПб.: Наука, 1996. 189 с.

21. Анисимова О.В., Штаер О.В. Морфология поровых каналов клеточной стенки у представителей рода Euastrum Ralfs (Desmidiales) // Вестник Московского университета. Биология. Сер. 16. 2018. T. 73. № 1. С. 34–37.

22. Аннотированный список фауны озера Байкал и его водосборного бассейна / ред. О.А. Тимошкин, Т.Я. Ситникова, О.Т. Русинек и др. Новосибирск: Наука, 2001. Т. 1: Озеро Байкал, кн. 1. 832 с.

23. Аннотированный список фауны озера Байкал и его водосборного бассейна / ред. О.А. Тимошкин, Т.Я. Ситникова, О.Т. Русинек и др. Новосибирск: Наука, 2004. Т. 1: Озеро Байкал, кн. 2. 1679 с.

24. Антропогенное воздействие на малые озера. Л.: Наука, 1980. 170 с.

25. Аринушкина Е.В. Руководство по химическому анализу почв. М: Изд-во МГУ, 1961. 491 с.

26. Артемчук Н.Я. Микофлора морей СССР. М.: Наука, 1981. 190 с.

27. Арэ Ф.Э., Толстяков Д.Н. О проникновении солнечной радиации в воду // Метеорол. гидрол. 1969. № 6. С. 58–64.

28. Астахов М.В. Дрифт беспозвоночных на предгорном участке реки Кедровая (Приморский край) в теплый период года // Биология внутр. вод. 2014. № 1. С. 52–59.

29. Астахов М.В., Скрипцова А.В. Потенциал утилизации аллохтонных беспозвоночных амфиподами Gammarus koreanus Uéno // Тр. Института биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН. 2020. Вып. 92(95). С. 28–38.

30. Атлас беспозвоночных Каспийского моря. М.: Пищевая промышленность, 1968. 420 с.

31. Афанасьев С.А. Развитие европейских подходов к биологической оценке состояния гидроэкосистем в мониторинге рек Украины // Гидробиол. журнал. 2001. Т. 37. № 5. С. 3–18.

32. Афанасьев С.А. Перифитон в биомониторинге речных систем // Перифитон континентальных вод: современное состояние изученности и перспективы дальнейших исследований. Мат. докл. Межд. симпозиума. Тюмень: ООО “Опцион ТМ-Холдинг”, 2003. С. 86–87.

33. Бабицкий В.А. Вертикальное распределение микрозообентоса в донных осадках озера Нарочь // Биологические и рыбохозяйственные исследования водоемов Прибалтики. Псков, 1983. Т. 1. С. 90–93.

34. Бабицкий В.А. Микрозообентос трех озер разного типа // Гидробиол. журн. 1980. Т. 16. № 1. С. 37–45.

35. Бабицкий В.А. Распределение микрофауны в толще отложений мезотрофного озера // Гидробиол. журн. 1987. Т. 23. № 2. С. 36–40.

36. Баканов А.И. Номограмма для оценки необходимого количества проб бентоса // Биология внутренних вод: Информ. бюл. 1978. № 39. С. 86–89.

37. Баканов А.И. Номограмма для оценки количества проб гидробионтов в случае их статистического распределения по закону Пуассона // Биология внутренних вод: Информ. бюл. 1979. № 41. С. 69–71.

38. Баканов А.И. О планировании бентосных съемок / ИБВВ АН СССР. Борок, 1979. 16 с. Деп. в ВИНИТИ 07.05. 79, № 1596-79.

39. Баканов А.И. Номограмма для оценки количества проб при агрегированном распределении гидробионтов // Гидробиол. журн. 1984. Т. 20. № 6. С. 74–77.

40. Баканов А.И. Использование зообентоса для мониторинга пресноводных водоемов (обзор) // Биология внутр. вод. 2000. № 1. С. 68–82.

41. Баканов А.И. Об оценке качества воды и грунтов пресноводных водоемов по характеристикам бентосных сообществ // Экология. 2004. № 6. С. 464–467.

42. Баканов А.И. Количественная оценка доминирования в экологических сообществах // Количественные методы экологии и гидробиологии. Тольятти: Самарский науч. центр РАН, 2005. С. 37.

43. Баланда О.В., Медведь В.А., Сакевич А.И. Алкалоиды кубышки желтой (Nuphar lutea (L.) Smith.) и их влияние на жизнедеятельность цианобактерий и водорослей // Гидробиол. журн. 2004. Т. 40. № 4. С. 106–118.

44. Балонов И.М. Подготовка водорослей к электронной микроскопии // Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. С. 87–90.

45. Балушкина Е.В. Хирономиды как индикаторы степени загрязнения вод // Методы биологического анализа пресных вод. Л.: Зоол. ин-т АН СССР, 1976. С. 106–118.

46. Балушкина Е.В. Зависимость массы тела личинок хирономид от их длины // Гидробиол. журн. 1982. Т. 27. № 3. C. 53–60.

47. Балушкина Е.В. Зависимость скорости потребления кислорода от массы тела и температуры у личинок хирономид // Гидробиол. журн. 1984. Т. 20. № 5. C. 66–72.

48. Балушкина Е.В. Применение интегрального показателя для оценки качества вод по структурным характеристикам донных сообществ // Реакция озерных экосистем на изменение биотических и абиотических условий. СПб.: ЗИН РАН, 1997. С. 266–292.

49. Балушкина Е.В., Винберг Г.Г. Зависимость между длиной и массой тела планктонных ракообразных // Экспериментальные и полевые исследования биологических основ продуктивности озер. Л.: ЗИН АН СССР, 1979. С. 59–79.

50. Баринова С.С., Бeлоус Е.П., Царенко П.М. Альгоиндикация водных объектов Украины: методы и перспективы. Хайфа; Киев: Изд-во Университета Хайфы, 2019. 367 с.

51. Барков Д.В., Курашов Е.А. Особенности экологии и биологии байкальской эндемичной амфиподы Gmelinoides fasciatus (Stebbing, 1899) в Ладожском озере // Литоральная зона Ладожского озера / Под ред. Курашова Е.А. СПб.: Нестор-История, 2011. С. 294–350.

52. Барышев И.А. Методики изучения дрифта гидробионтов в малых реках: обзор // Биология внутр. вод. 2006. № 3. С. 91–96.

53. Барышев И.А. Макрозообентос рек Восточной Фенноскандии. Петрозаводск: КарНЦ РАН, 2023. 334 с.

54. Барышев И.А., Веселов А.Е. Сезонная динамика бентоса и дрифта беспозвоночных организмов в некоторых притоках Онежского озера // Биология внутр. вод. 2007. № 1. С. 80–86.

55. Барышев И.А., Веселов А.Е., Зубченко А.В., Калюжин С.М. Кормовая база атлантического лосося в бассейне реки Варзуга // Биология, воспроизводство и состояние запасов анадромных и пресноводных рыб Кольского полуострова. Мурманск: Изд-во ПИНРО, 2005. С. 21–30.

56. Батаева Ю.В., Григорян Л.Н., Курашов Е.А., Крылова Ю.В., Федорова Е.В., Явид Е.Я., Ходонович В.В., Яковлева Л.В. Изучение метаболитов Streptomyces carpaticus RCAM04697 для создания экологически безопасных средств защиты растений // Теоретическая и прикладная экология. 2021. № 3. С. 172–178. DOI:https://doi.org/10.25750/1995-4301-2021-3-172-178

57. Батаева Ю.В., Григорян Л.Н., Богун А.Г., Кисличкина А.А., Платонов М.Е., Курашов Е.А., Крылова Ю.В., Федоренко А.Г., Андреева М.П. Биологическая активность и состав метаболитов штамма Streptomyces carpaticus К-11 RCAM04697 (SCPM-O-B-9993), перспективного для использования в растениеводстве // Микробиология. 2023. Т. 92. № 3. С. 318–328. DOI:https://doi.org/10.31857/S0026365622600730

58. Безматерных Д.М. Зообентос как индикатор экологического состояния водных экосистем Западной Сибири аналит. обзор // Гос. публич. науч.-техн. б-ка Сиб. отд-ния РАН, Ин-т вод. и экол. проблем. Сер. Экология. Вып. 85. Новосибирск, 2007. 87 с.

59. Безматерных Д.М. Зообентос равнинных притоков Верхней Оби / отв. ред. В.В. Кириллов. Барнаул: Изд-во Алт. ун-та, 2008. 186 с.

60. Безматерных Д.М., Вдовина О.Н. Зообентос озер юга Обь-Иртышского междуречья // Экология. Серия аналитических обзоров мировой литературы. 2017. № 106. С. 1–180.

61. Безматерных В.В., Щербина Г.Х. Об оптимальном числе проб для оценки количественных показателей макрозообентоса на участке водоема // Биология внутр. вод. 2017. № 3. С. 83–87.

62. Белавская А.П. Высшая водная растительность // Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. С. 117.

63. Беляева П.Г. Структура фитоперифитона и его функциональная роль в р. Сылва (Бассейн Камы) // Вестник Тюменского государственного университета. 2005. № 5. С. 32.

64. Беляков В.П. Состав и структура зообентоса притоков Ладожского озера // Оценка экологического состояния рек бассейна Ладожского озера по гидрохимическим показателям и структуре гидробиоценозов. СПб.: Изд-во “Лема”. 2006. С. 108–113.

65. Берсенева Г.П. Феофитинизация хлорофилла в процессе экстракции пигментов из морских одноклеточных водорослей // Экология моря. 1988. № 28. С. 36–39.

66. Биогеохимические основы экологического нормирования. М.: Наука, 1993. 304 с.

67. Биологические методы исследования водоемов в Финляндии / Ред.: Руоппа М., Хейнонен П. Suomen Ympäristökeskus. Helsinki, 2006. 111 с.

68. Богатов В.В. Значение бентостока в процессах биологического продуцирования в реках // Экология. 1984. № 3. С. 51–60.

69. Богатов В.В. Классификация дрифта речного бентоса // Гидробиол. журн. 1988. Т. 24. № 1. С. 29–33.

70. Богатов В.В. Некоторые особенности динамики бентостока в условиях дождевого паводка // Систематика и экология речных организмов. Владивосток, 1989. С. 112–119.

71. Богатов В.В. Экология речных сообществ российского Дальнего Востока. Владивосток: Дальнаука, 1994. 218 с.

72. Богатов В.В. Основные методы изучения дрифта речного бентоса // Чтения памяти проф. Владимира Яковлевича Леванидова. Вып. 3. Владивосток: Дальнаука, 2005. С. 5–17.

73. Богатов В.В. Соотношение биомассы и дрифта у речных бентосных беспозвоночных // Биология внутр. вод. 2014. Т. 7. № 2. С. 69–75.

74. Богатов В.В. Алимов А.Ф. Телеш И.В. Актуальные проблемы гидробиологии // Вестник Российской академии наук. 2007. Т. 77. № 6. С. 556–559.

75. Богатов В.В., Астахов М.В. Вертикальное распределение дрейфующих личинок поденок и двукрылых на перекате р. Кедровая (Приморский край) // Вестник Северо-Восточного научного центра ДВО РАН. 2013. № 1. С. 39–48.

76. Богатов В.В., Федоровский  А.С. Основы речной гидрологии и гидробиологии. Владивосток: Дальнаука, 2017. 384 с.

77. Болотов С.Э., Романенко А.В., Цветков А.И., Крылов А.В. Нарушение вертикального распределения планктона в устьевой области притока равнинного водохранилища летом жаркого года // Поволжский экологический журнал. 2014. № 3. С. 304–310.

78. Болотов С.Э., Цветков А.И., Крылов А.В. Зоопланктон зон слияния незарегулированных рек // Биология внутр. вод. 2012. № 2. С. 29–36.

79. Борзых О.Г. Биоразнообразие мицелиальных грибов – ассоциантов двустворчатых моллюсков залива Петра Великого Японского Моря. Автореф. дис. … канд. биол. наук. Владивосток, 2013. 22 с.

80. Бравина И.В. Микофлора комаров мелководных зон Рыбинского водохранилища и дельты Волги // Микология и фитопатология. 1987. Т. 21. Вып. 1. С. 8–13.

81. Брехов О.Г. Методические рекомендации по выполнению научно-исследовательских работ по энтомологии. Волгоград: Перемена, 2006. 28 c.

82. Бубнова Е.Н. Изменения комплексов почвообитающих грибов при переходе от зональных почв к морским экотопам (на примере побережья Кандалакшского залива Белого моря). Автореферат дисс. … канд. биол. М., 2005. 27 с.

83. Бульон В.В. Первичная продукция планктона внутренних водоемов. Л.: Наука, 1983. 150 с.

84. Бульон В.В. Фотосинтетическая активность хлорофилла “а” в пресноводном планктоне // ДАН СССР. 1984. Т. 274. № 4. С. 1002–1004.

85. Бульон В.В. Водоем и его водосборная площадь как единое целое // Озерные экосистемы: биологические процессы, антропогенная трансформация, качество воды. Матер. III Междунар. науч. конф. Минск: Изд. центр. Белорусского гос. ун-та, 2007. С. 10.

86. Бульон В.В. Моделирование биотического потока энергии в планктонном сообществе экосистемы озерного типа при участии микробиальных процессов // Биология внутр. вод. 2019. № 3. С. 3–10. DOI:https://doi.org/10.1134/S032096521904003X

87. Бульон В.В., Никулина В.Н., Павельева Е.Б. и др. Микробиальная “петля” в трофической сети озерного планктона // Журнал общей биологии. 1999. Т. 60. № 4. С. 431.

88. Быкова С.Н. Влияние макрофитов на сукцессию микроперифитонных сообществ // Биология внутренних вод: материалы докладов XIII Междунар. молодежной школы-конференции (Борок, 23–26 октября 2007 г.). Нижний Новгород: Вектор ТиС, 2007. С. 33–40.

89. Вайнштейн М.Б., Лауринавичус К.С. Учет и культивирование анаэробных бактерий. Методические рекомендации. Пущино: ОНТИ НЦБИ АН СССР, 1988. 64 с.

90. Вайнштейн М.Б., Алферов В.А., Вацурина В.А. Водная микробиология и биогеохимия: Учеб. пособие. Тула: Изд-во ТулГУ, 2007. 145 с.

91. Василевич В.И. Статистические методы в геоботанике. Л.: Наука, 1969. 232 с.

92. Введение в биомониторинг пресных вод: учебное пособие / Вшивкова Т.С., Иваненко Н.В., Якименко Л.В., Дроздов К.А. Владивосток: Изд-во ВГУЭС, 2019. 241 с.

93. Ведерников И.И., Микаэлян А.С. Количественный учет морского фитопланктона с использованием ядерных фильтров // Океанология. 1981. Т. 21. № 5. С. 927–933.

94. Винберг Г.Г. Первичная продукция водоемов. Минск: Изд-во АН БССР, 1960. 329 с.

95. Винберг Г.Г. Поток энергии в экосистеме эвтрофного озера // ДАН СССР. 1969. Т. 186. № 1. С. 198–201.

96. Винберг Г.Г. Формирование представлений о продукции // Общие основы изучения водных экосистем. Л.: Наука, 1979. С. 114–118.

97. Винберг Г.Г. Температурный коэффициент Вант-Гоффа и уравнение Арениуса в биологии // Журн. общ. биол. 1983. Т. 44. № 1. С. 31–42.

98. Винберг Г.Г. Некоторые итоги практики применения продукционно-гидробиологических методов // Продукция популяций и сообществ водных организмов и методов ее изучения. Свердловск: Урал. центр АН СССР, 1985. С. 3–18.

99. Винберг Г.Г. Общие особенности продукционных процессов в Нарочанских озерах // Экологическая система Нарочанских озер. Минск: Белорусский ун-т, 1985. С. 269–284.

100. Винберг Г.Г., Печень Г.А., Шушкина Э.А. Продукция планктонных ракообразных в трех озерах разного типа // Зоол. журн. 1965. Т. 44. Вып. 5. С. 676–687.

101. Виноградов Г.А., Тагунов В.Б. Установка для изучения влияния различных веществ на рыб и беспозвоночных в проточных условиях // Гидробиол. журн. 1989. Т. 25. № 3. С. 7477.

102. Воробьева Л.В. Мейобентос украинского шельфа Черного и Азовского морей. Киев: Наук. Думка, 1999. 300 с.

103. Воробьева Л.В., Зайцев Ю.П., Кулакова И.И. Интерстициальная мейофауна песчаных пляжей Черного моря / АН Украины. Ин-т биологии юж. морей им. А.О. Ковалевского. Киев: Наукова думка, 1992. 144 с.

104. Воронин Л.В. Грибы, развивающиеся на лещах и судаках некоторых пресных водоемов// Микология и фитопатология. 1986. Т. 20. Вып. 5. С. 353–361.

105. Воронин Л.В. Грибы рода Phoma Sacc. из воды и рыб пресных водоемов // Микология и фитопатология. 1989а. Т. 23. Вып. 1. С. 19–28.

106. Воронин Л.В. Основные группы сапротрофных грибов на поверхности тела щуки// Биология внутр. вод: Информ. бюллетень. Л.: Наука, 1989б. № 83. С. 16–19.

107. Воронин Л.В. Влияние промышленных стоков на состояние микобиоты леща Рыбинского водохранилища // Микология и фитопатология. 1992. Т. 26. Вып. 1. С. 15–19.

108. Воронин Л.В. Микологическая индикация состояния экосистем водоемов Воркуты и ее окрестностей // Биоиндикация состояния природной среды Воркутинской тундры (Тр. Коми научного центра УрО РАН, № 143). Сыктывкар, 1996. С. 83–91.

109. Воронин Л.В. Водные и воздушно-водные гифомицеты в малых озерах окрестностей Воркуты // Микология и фитопатология. 1997. Т. 31. Вып. 2. С. 9–17.

110. Воронин Л.В. Микобиота малых озер тундровой и лесной зон. Ярославль: Изд-во ЯГПУ, 2010. 156 с.

111. Воронин Л.В. Грибы и грибоподобные организмы в пресноводных экосистемах. Ярославль: Филигрань, 2023. 123 с.

112. Воронин Л.В., Жданова С.М. Поражение микопаразитами ветвистоусого рачка Daphnia cucullata (Crustacea, Cladocera, Daphniidae) в оз. Плещеево (Ярославская обл., Россия) // Биология внутр. вод. 2021. № 6. С. 655–659. DOI:https://doi.org/10.1134/S1995082921060146

113. Воронин Л.В., Жданова С.М. Распространение и роль грибов и грибоподобных организмов в зоопланктоне пресноводных экосистем (Обзор) // Труды Института биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН. 2023. Вып. 103(106). С. 7–16. DOI:https://doi.org/10.47021/0320-3557-2023-7-16

114. Воронин Л.В., Микряков В.Р. Роль Phoma glomerata (Cda.) Wr. et Hochapfel в микобиоте рыб // Микология и фитопатология. 1992. Т. 26. Вып. 6. С. 456–459.

115. Воронин Л.В., Солнцева И.О. Гифальные грибы и дрожжи в озерах, подверженных ацидификации // Структура и функционирование экосистем ацидных озер. СПб.: Наука, 1994а. С. 125–143.

116. Воронин Л.В., Солнцева И.О. Микобиота филлопланы Nuphar lutea (L.) Smith в озерах Дарвинского заповедника // Микология и фитопатология. 1994б. Т. 28. Вып. 1. С. 18–27.

117. Воронина Н.М. Горизонтальное распределение зоопланктона в северных отрогах Рыбинского водохранилища // Тр. Всес. гидробиол. общества. М.: Изд-во АН СССР. 1959. С. 249–278.

118. Вудивисс Ф.С. Совместные англо-советские биологические исследования в Ноттингеме в 1977 г. // Научные основы контроля качества поверхностных вод по гидробиологическим показателям. Л.: Гидрометеоиздат, 1981. С. 117–189.

119. Гаврилов Н.И., Турлапов В.Е., Патрушев И.В., Семьянов А.В. Локальное численное исследование морфологии 3D-реконструкций биологических объектов в величинах SVR – отношения площади к объему // Вестник Нижегородского университета им. Н.И. Лобачевского. 2012. № 5–2. С. 49–58.

120. Гаврилко Д.Е., Шурганова Г.В., Кудрин И.А., Якимов В.Н. Выявление функциональных групп пресноводного зоопланктона на основе функциональных признаков видов // Поволжский экологический журнал. 2020. № 3. С. 290–306. DOI:https://doi.org/10.35885/1684-7318-2020-3-290-306

121. Гаевская Н.С. Роль высших водных растений в питании животных пресных водоемов. М.: Наука, 1966. 326 с.

122. Гаевский Н.А., Колмаков B.И., Попельницкий В.А. и др. Оценка влияния светового фактора при флуоресцентном определении интенсивности фотосинтеза у планктонных микроводорослей // Физиология растений. 2000. Т. 47. № 6. С. 930–935.

123. Гаевский Н.А., Шатров И.Ю., Гольд В.М. Флуоресцентный анализ пигментов фитопланктона // Методические вопросы изучения первичной продукции внутренних водоемов. СПб: Гидрометеоиздат. 1993. С. 101–109.

124. Галаговец Е.А., Прусова И.Ю. Первые обнаружения опухолеподобных аномалий у планктонных копепод в прибрежных водах Крыма // Журнал Сибирского федерального университета. Биология. 2016. Т. 9. № 4. С. 441–451.

125. Галковская Г.А. О расчете продукции естественных популяций коловраток // Продукция популяций и сообществ водных организмов и методы ее изучения. Свердловск, 1985. С. 48–57.

126. Галковская Г.А., Винберг Г.Г. Зависимость скорости потребления кислорода коловратками от массы тела // Общие основы изучения водных экосистем. Л.: Наука, 1979. 273 с.

127. Гальцова В.В. Мейобентос в морских экосистемах (на примере свободноживущих нематод) // Тр. Зоологического Института АН СССР. 1991. T. 224. 240 с.

128. Гептнер М.В., Заикин А.Н., Рудяков Ю.А. Мертвые копеподы в планктоне: факты и гипотезы // Океанология. 1990. Т. 30. № 1. С. 132–137.

129. Герасимова А.А., Герасимов А.Г., Шарапова Т.А. Колониальные беспозвоночные в зооперифитоне водоема-охладителя ТЭЦ (Западная Сибирь) // Биология внутр. вод. 2021. № 2. С. 1–8.

130. Герасимов Ю.В., Поддубная Н.Я., Вахненко А.Ф., Семенова А.С., Жданова С.М., Цветков А.И., Павлов Д.Д., Болотов С.Э., Борисенко Э.С. Влияние высоконапорной Братской ГЭС на зоопланктон Братского водохранилища // Биология внутр. вод. 2023. № 4. С. 473–490.

131. Гидробиологический режим малых рек в условиях антропогенного воздействия. Рига: Зинатне, 1981. 166 с.

132. Гидроэкология устьевых областей притоков равнинного водохранилища / ред. А.В. Крылов. Ярославль: Филигрань, 2015. 466 с.

133. Гиляров А.М. Соотношение биомассы и видового разнообразия в планктонном сообществе // Зоол. журн. 1969. Т. 48. № 4. С. 485–493.

134. Гладышев М.И. Суточная динамика вертикального распределения массовых видов зоопланктона в Сыдинском заливе Красноярского водохранилища // Известия Сиб. отдел. АН СССР. Сер. Биологические науки. 1990. Вып. 3. С. 78–85.

135. Гладышев М.И. Устройство для окрашивания организмов зоопланктона с целью дифференциации живых и мертвых особей в фиксированных пробах // Гидробиологический журнал. 1993. Т. 29. № 2. С. 94–97.

136. Гламазда В.В. Рост и размножение некоторых копепод в Цимлянском водохранилище // Тр. Волгоградского отд. Гос. ин-та. озер. и реч. рыбного хоз-ва. 1971. Т. 5. С. 45–50.

137. Глотов Н.В., Животовский Л.А., Хованов Н.В., Хромов‑Борисов Н.Н. Биометрия. Л.: Изд-во ЛГУ, 1982. 264 с.

138. Головатюк Л.В., Зинченко Т.Д. Биотические идентификаторы в оценке качества воды эталонной реки: сравнительный анализ биоиндикационных индексов реки Байтуган (Высокое Заволжье) // Ученые записки Казанского университета. 2020. Т. 162. Кн. 1. С. 134–150.

139. Головатюк Л.В., Зинченко Т.Д., Шитиков В.К. Индикаторная оценка организмов макрозообентоса текучих вод // Биология внутр. вод. 2008. № 3. С. 66–79.

140. Головатюк Л.В., Михайлов Р.А., Греков И.М., Курина Е.М. Фауна макрозообентоса рек бассейна Волгоградского водохранилища (на примере р. Еруслан) // Бюл. Московского общ-ва испытателей природы. Отд. биологический. 2023. Т. 128. № 4. С. 14–26. DOI:https://doi.org/10.55959/MSU0027-1403-BB-2023-128-4-14-26.

141. Голуб В.Б., Цуриков М.Н., Прокин А.А. Коллекции насекомых: сбор, обработка и хранение материала. 2-е изд., испр. и доп. М.: Т-во научных изданий КМК, 2021. 358 с.

142. Голубков С.М. Соотношение скоростей роста и энергетического обмена у водных личинок насекомых // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ. 1984. № 223. С. 103–107.

143. Голубков С.М. Функциональная экология личинок амфибиотических насекомых // Тр. ЗИНРАН. 2000. Т. 284. 294 с.

144. Гольд В.М., Гаевский Н.А. Шатров И.Ю. и др. Опыт использования флуоресценции для дифференциальной оценки содержания хлорофилла a у планктонных водорослей // Гидробиол. журн. 1986. Т. 22. № 3. С. 80–85.

145. Гольд В.М., Гаевский Н.А., Григорьев Ю.С. и др. Теоретические основы и методы изучения флуоресценции хлорофилла. Красноярск: КрГУ, 1984. 84 с.

146. Гольд В.М., Попельницкий В.А. Определение фотосинтеза фитопланктона флуоресцентным методом // Методические вопросы изучения первичной продукции планктона внутренних водоемов. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. С. 25–30.

147. Гончаров А.В., Гречушникова М.Г., Пуклаков В.В. Новые возможности классического метода: автоматизированное определение первичной продукции и деструкции органического вещества в водоеме // Биология внутр. вод. 2018. № 4. С. 107–110.

148. Гончаров А.В., Ершова М.Г., Сахарова М.И., Эдельштейн К.К. Гидрологическая структура и распределение планктона в стратифицированном водохранилище в условиях ветрового воздействия // Биология внутр. вод. 2002. № 2. С. 38–45.

149. ГОСТ 17.1.3.07-82. Охрана природы. Гидросфера. Правила контроля качества воды водоемов и водотоков. М.: Гос. ком. СССР по стандартам, 1982.

150. ГОСТ 24027.2-80. Сырье лекарственное растительное. Методы определения влажности, содержания золы, экстрактивных и дубильных веществ, эфирного масла. М.: Издательство стандартов, 1980. 31 с.

151. Государственная Фармакопея СССР. Издание XI. Выпуск 1. 1987. 335 с.

152. Грей-Грейг-Смит П. Количественная экология растений. М.: Мир, 1967. 359 с.

153. Грезе Б.С., Карпова К.И. О планктоне оз. Тургояк // Тр. Уральского отд. Всесоюзн. ин-та озерн. рыбн. хоз-ва. 1941. Т. 3. С. 38–46.

154. Григориади А.С., Якупова А.Б., Амирова А.Р., Ерохина Н.И. Микологическая оценка почвы, загрязненной отходами производства нефтеперерабатывающей промышленности // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. 2011. Т. 13. № 5(2). С. 155–157.

155. Гринберг Р.Г. О методах лова и количественного учета фитопланктона. Приложение к Отчету врем. комит. по изыск. мер и охране водоемов Моск. пром. р-на за 1914 г. 1915. М. С. 19–61.

156. Гринцов В.А. Таксономическое разнообразие Amphipoda (Crustacea) Черного и Азовского морей // Морской биологический журнал. 2022. Т. 7. № 1. С. 34–45. DOI:https://doi.org/10.21072/mbj.2022.07.1.03

157. Грицевская Г.Л. Гидрологические условия в карельских реках, впадающих в Белое Море (к проблеме акклиматизации горбуши) // Материалы рыбохоз. исслед. северного бассейна. Вып. 1. Мурманск, 1963. С. 36–39.

158. Громов В.В. Гидрофауна затопленной древесины Сылвенского залива Камского водохранилища // Зоологический журнал. 1961. Вып. 3. С. 309–316.

159. Гурвич В.В. Методика количественного изучения микро- и мезобентоса // Биол. внутр. вод. Ин-форм. бюл. 1969. № 3. C. 57–63.

160. Гурвич В.В. Распределение микро- и мезобентических животных в толще грунта // Самоочищение, биопродуктивность и охрана водоемов и водотоков Украины. Киев: Наук. Думка, 1975. С. 28–29.

161. Гуревич Ф.А. К вопросу о взаимоотношении между растениями и эмбрионами пресноводных животных // Докл. АН СССР. 1948. Т. 59. № 3. С. 569–572.

162. Гуревич Ф.А. К вопросу о протистоцидных свойствах водных и прибрежно-водных растений // Сб. науч. трудов Красноярского гос. мед. ин-та. 1953. № 3. С. 212–214.

163. Гуревич Ф.А. О роли фитонцидов в ценозах водоемов // Охрана и рациональное использование живой природы водоёмов Казахстана. Матер. конф. Алма-Ата, 1969. С. 137–139.

164. Гуревич Ф.А. Фитонциды водных и прибрежных растений, их роль в гидробиоценозах. Автореф. дис. на соиск. уч. ст. доктора биологических наук. Иркутский государственный университет им. А.А. Жданова. Иркутск, 1973. 30 с.

165. Гуревич Ф.А. Роль фитонцидов во внутренних водоемах // Водные ресурсы. 1978. № 2. С. 133–142.

166. Гусаков В. А. Мейобентос Рыбинского водохранилища. М.: Т-во науч. изд. КМК, 2007. 155 с.

167. Гусева К.А. Методы эколого-физиологического исследования водорослей // Жизнь пресных вод. Т. IV. Ч. 1. М.–Л.: Изд-во АН СССР, 1956. С. 122.

168. Девяткин В.Г. Микрофитобентос // Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов / Отв. ред. Мордухай-Болтовской Ф.Д. М.: Наука, 1975. С. 108–116.

169. Диатомовые водоросли СССР (ископаемые и современные). Л.: Наука, 1974. Т. I. Вып. 1. 403 c.

170. Джендереджян К.Г., Унанян А.С. Связь между массой тела и некоторыми линейными параметрами тубифицид на примере Potamothrixhammoniensis (Michaelsen) // Водные малощетинковые черви. Материалы VI Всесоюз. симп., Саласпилс, 27–30 апр. 1987. Рига, 1987. С. 64–66.

171. Дзюбан Н.А., Кузнецова С.П. О гидробиологическом контроле качества вод по зоопланктону // Научные основы контроля качества вод по гидробиологическим показателям. Тр. Всесоюз. конф. Л.: Наука, 1981. С. 117–136.

172. Добрецов С.В., Раилкин А.И. Влияние характеристик поверхности на оседание и прикрепление личинок мидии съедобной Mytilus edulis (Mollusca, Filibranchia) // Зоологический журн. 1996. № 4. С. 499–506.

173. Добрынин А.Э. Суточная динамика вертикального распределения зоопланктона в олиготрофном озере // Биология внутр. вод. 2009. № 2. С. 62–71.

174. Донерьян Л.Г., Водянова М.А., Тарасова Ж.Е. Микроскопические почвенные грибы – организмы-биоиндикаторы нефтезагрязненных почв // Гигиена и санитария. 2016. № 95(9). С. 891–894. DOI:https://doi.org/10.18821/0016-9900-2016-95-9-891-894

175. Драбкова В.Г., Сорокин И.Н. Озеро и его водосбор – единая природная система. Л.: Наука, 1979. 195 с.

176. Дроботов А.В. Пространственная структура и несинхронные вертикальные миграции зоопланктона в стратифицированном меромиктическом озере. Дис. … канд. биол. наук. Красноярск, 2014. 135 с.

177. Дроздова Н.С., Терехова В.А., Зазовская Э.П., Трофимов С.Я. Разложение органического вещества почв древнерусских поселений при внесении (интродукции) микромицетов // Вестник Московского университета. Серия 17: Почвоведение. 2001. № 4. С. 41–46.

178. Дубовская О.П. Естественная смертность зоопланктона в водохранилищах бассейна Енисея. Дис. … докт. биол. наук. Красноярск, 2006. 335 с.

179. Дубовская О.П. Оценка количества мертвых особей рачкового зоопланктона в водоеме с помощью окрашивания проб анилиновым голубым: методические аспекты применения // Журнал Сибирского Федерального университета. Сер. Биология. 2008. № 2. С. 145–161.

180. Дубовская О.П. Не связанная с хищниками смертность планктонных ракообразных, ее возможные причины (обзор литературы) // Журнал общей биологии. 2009. Т. 70. № 2. С. 168–192.

181. Дудаков М.О., Дудакова Д.С. Интеллектуальный дночерпатель. Патент на изобретение RU 2794956 C1, 26.04.2023. Заявка № 2022119519 от 18.07.2022.

182. Дудаков М.О., Дудакова Д.С. Модернизированные варианты дночерпателя Экмана-Берджи с дополнительным сенсорным и вычислительным оборудованием для автоматизации захвата и оценивания качества пробы // Морские интеллектуальные технологии. 2022. № 4–3(58). С. 92–99.

183. Дудаков М.О., Дудакова Д.С., Ронжин А.Л. Разработка и опытная эксплуатация модернизированного дночерпателя Экмана-Берджи с автоматизацией захвата и оценивания качества пробы // Мат. X-го Междунар. Балтийского морского форума. 26 сентября – 1 октября 2022 года. Т. 3: Водные биоресурсы, аквакультура и экология водоемов. Калининград: “Балтийская государственная академия рыбопромыслового флота”, 2022. С. 64–70.

184. Дудакова Д.С., Дудаков М.О., Мухин И.А., Станиславская Е.В., Капустина Л.Л. Влияние мелкомасштабных придонных движений воды на пространственное распределение перифитона и мейобентоса скальной литорали // Биологические ресурсы: изучение, использование, охрана. Мат. IV Всероссийской научной конференции. ВоГУ. Вологда 19–22 апреля 2018 г. C. 91–100.

185. Дудакова Д.С., Мухин И.А., Дудаков М.О. Пространственная сложность скалистой литорали как фактор, влияющий на количественные и структурные характеристики сообществ гидробионтов // Биологические ресурсы: изучение, использование, охрана. Мат. Межрегион. научно-практич. конф. 2016. С. 39–46.

186. Дудка И.А. Водные несовершенные грибы СССР. Киев: Наук. думка, 1985. 188 с.

187. Дуплаков С.Н. Некоторые наблюдения над вертикальным распределением обрастаний в Глубоком озере // Труды гидробиол. станции на Глубоком озере. 1928. Т. 6. Вып. 4. С. 20.

188. Дуплаков С.Н. Материалы к изучению перифитона // Тр. лимнол. станции в Косине. 1933. Вып. 16. С. 3–160.

189. Дьяченко И.П. Предварительные результаты сравнительных исследований орудий лова планктона // Биология внутр. вод. Информ. бюл. 1960. № 8–9. С. 79–83.

190. Дьяченко И.П. Сравнительный анализ уловистости планктоночерпателя системы Богорова и планктонобатометра // Материалы по биологии и гидрологии волжских водохранилищ. М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1963. С. 29–34.

191. Дятлов С.Е., Гончаров А.Ю., Богатова Ю.И. Трофический статус северо-западной части Черного моря // Вода: гигиена и экология. 2013а. № 1 (1). С. 51–60.

192. Дятлов С.Е., Кошелев А.В., Петросян А.Г., Павлова Е.А., Секундяк Л.Ю. Интегральная оценка качества воды и донных отложений полигона “Одесский регион северозападной части Чёрного моря” // Наукові записки Тернопільського національного педагогічного університету імені Володимира Гнатюка. Серія: Біологія. 2013б. № 2(55). С. 50–56.

193. Ермохин М.В. Экологическая структура маргинальных участков речных биоценозов в переходной зоне вода-суша. Автореф. дисс. ... канд. биол. наук. Самара, 2000. 18 с.

194. Есин Е.В., Чебанова В.В., Леман В.Н. Экосистема малой лососевой реки Западной Камчатки. Среда обитания, донное население и ихтиофауна. М: Товарищество научных изданий КМК, 2009. 173 с.

195. Жадин В.И. Фауна рек и водохранилищ // Тр. Зоол. ин-та. 1940. Т. 5. Вып. 3–4. 992 с.

196. Жадин В.И. Общие вопросы, основные понятия и задачи гидробиологии пресных вод // Жизнь пресных вод СССР. Т. 3. М.–Л.: Изд-во АН СССР, 1950. С. 7–112.

197. Жадин В.И. Методика изучения донной фауны водоемов и экологии донных беспозвоночных // Жизнь пресных вод СССР. Т. 4. Ч. 1 / под ред. В.И. Жадина, Е.Н. Павловского. М.–Л.: Изд-во АН СССР, 1956. С. 278–382.

198. Жадин В.И. Методы гидробиологических исследований. М.: Изд-во Высшая школа, 1960. С. 27–56.

199. Жадин В.И., Герд С.В. Реки, озера и водохранилища СССР, их фауна и флора. М.: Учпедгиз, 1961. 597 с.

200. Жданова С.М. Diaphanosoma mongolianum Ueno, 1938 (Cladocera: Sididae) в озерах Ярославской области (Россия) // Биология внутр. вод. 2018. № 2. С. 20–28. DOI:https://doi.org/10.7868/S0320965218020031

201. Жданова С.М. Холодолюбивая коловратка Synchaeta lakowitziana Lucks 1912 (Rotifera, Synchaetidae) в озере Плещеево (Ярославская обл., Россия) // Зоологический журнал. 2023. Т. 102. № 1. С. 22–26.

202. Жданова С.М., Малин М.И. Особенности подледного зоопланктона озера Плещеево (Ярославская обл., Россия) // Трансформация экосистем. 2023. № 3. С. 39–52.

203. Жданова С.М., Сабитова Р.З., Цветкова М.В. Состав и структура зоопланктона озера Плещеево // Труды Института биологии внутренних вод РАН. 2019. № 86(89). С. 34–56.

204. Живоглядова Л.А., Даирова Д.С., Лабай В.С.  Состав сиртона и суточная динамика дрифта донных беспозвоночных в р. Тымь и ее верхнем притоке – руч. Угловом (о-в Сахалин) // Труды ВНИРО. 2015. Т. 154. С. 57–69.

205. Жизнь пресных вод СССР / ред. Павловский Е.Н., Жадин В.И. Т. 4. Ч. 1. М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1956. 467 с.

206. Жирков И.А. Полихеты Северного Ледовитого океана. М.: Янус-К, 2001. 631 с.

207. Жирков И.А. Жизнь на дне. Био-география и био-экология бентоса. М: Т-во научных изданий КМК, 2010. 453 с.

208. Задереев Е.С., Толомеев А.П. Способ определения вертикального распределения и размерной структуры зоопланктона в водоеме // Патент RU 2 495 451 C1. 2013. Бюл. № 28.

209. Задереев Е.С., Толомеев А.П., Дроботов А.В. Несинхронные вертикальные миграции зоопланктона в стратифицированных озерах // Сибирский экологический журнал. 2012. № 4. С. 597–605.

210. Задорина В.М. Суточная динамика дрифта и суточная ритмика питания молоди семги в реках Кольского полуострова // Проблемы биологии и экологии атлантического лосося. Л.: Наука, 1985. С. 120–129.

211. Задорина В.М. Выбор экспозиции ловушки при сборе проб дрифта // Гидробиол. журн. 1987. Т. 23. № 2. С. 79–83.

212. Заика В.Е. Сравнительная продуктивность гидробионтов. Киев: Наукова думка, 1983. 206 c.

213. Зайцев Ю.П. Введение в экологию Чёрного моря. Одесса: “Эвен”, 2006. 224 с.

214. Залетаев В.С. Структурная организация экотонов в контексте управления // Экотоны в биосфере. 1997. С. 11–30.

215. Звягинцев А.Ю. Морское обрастание в северо-западной части Тихого океана. Владивосток: Дальнаука, 2005. 432 c.

216. Зеленская М.С., Сидельникова М.В., Панова Е.Г., Паутов А.А., Крылова Е.Г., Пагода Я.О., Власов Д.Ю. Грибы филлопланы в городской среде // Биосфера. 2017. Т. 9. № 2. С. 136–151. DOI:https://doi.org/10.24855/BIOSFERA/V912/353

217. Зенкевич Л.А. Биология морей СССР. М.: АН СССР, 1963. 719 с.

218. Зернов С.А. Общая гидробиология. М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1949. 587 с.

219. Зехнов М.И., Калецкая С.Л. Ускоренный способ приготовления тотальных микропрепаратов // Ученые записки ВВИ. 1961. Т. 17. С. 123–124.

220. Зинченко Т.Д. Хирономиды поверхностных вод бассейна Средней и Нижней Волги (Самарская область). Эколого-фаунистический обзор. Тольятти: ИЭВБ РАН, 2002. 174 с.

221. Зинченко Т.Д. Биоиндикация природных и техногенных гидросистем Волжского бассейна на примере хирономид (Diptera: Chironomidae). Автореф. дис. ... д-ра биол. наук. Тольятти, 2004. 38 с.

222. Зинченко Т.Д. Распределение хирономид и их индикационная значимость в оценке качества воды рек Самарской области. Тольятти: Анна, 2020. 207 с.

223. Зинченко Т.Д., Выхристюк Л.А., Шитиков В.К. Методологический подход к оценке экологического состояния речных систем по гидрохимическим и гидробиологическим показателям // Изв. Самар. НЦ РАН. 2000. Т. 2. № 2. С. 233–243.

224. Золотарев В.А. Моделирование биологических процессов в водоемах с использованием искусственных субстратов // Математическое моделирование в проблемах рационального природопользования: Тез. докл. Новороссийск, 1990. С. 68–69.

225. Иванов А.В., Мончадский А.С, Полянский Ю.И., Стрелков А.А. Большой практикум по зоологии беспозвоночных. Типы: Кольчатые черви, Членистоногие: Учеб. пособие для студентов биолог, спец. ун-тов. Ч. 2. 3-е изд., перераб. и доп. М.: Высшая школа, 1983. 543 с.

226. Иванов А.В., Полянский Ю.И., Стрелков А.А. Большой практикум по зоологии беспозвоночных. Простейшие, губки, кишечнополостные, гребневики, плоские черви, немертины, круглые черви: Учеб. пособие для биол. спец. ун-тов. 3-е изд., перераб. и доп. М.: Высшая школа, 1981. 504 с.

227. Иванова М.Б. Влияние загрязнения на планктонных ракообразных и возможности их использования для определения степени загрязнения реки // Методы биологического анализа пресных вод. Л.: Наука, 1976. С. 68–80.

228. Иванова М.Б. Продукция планктонных ракообразных в пресных водах. Л.: ЗИН АН СССР, 1985. 222 с.

229. Иванова М.Б., Крылов П.И. Расчет “реальной” продукции зоопланктона на примере озера Щучье (БАССР) // Трофические связи и их роль в продуктивности природных водоемов. Л.: ЗИН АН СССР, 1983. С. 4–11.

230. Иванова М.Б., Симонян А.А. Хищное питание Cyclops strenuus v. sevani Mesch. в озере Севан // Исследования пресноводных и морских беспозвоночных животных. Л.: ЗИН АН СССР, 1986. С. 129–141.

231. Иванова М.Б., Умнов А.А. Способы определения продукции популяций водных животных // Общие основы изучения водных экосистем. Л.: Наука, 1979. С. 119–133.

232. Ивантер Э.В., Коросов А.В. Элементарная биометрия: учеб. пособие. Петрозаводск: Изд-во ПетрГУ, 2010. 104 с.

233. Ивлева И.В. Температура среды и скорость энергетического обмена у водных животных. Киев: Наук. Думка, 1981. 232 с.

234. Израэль Ю.А., Гасилина Н.К., Абакумов В.А. Гидробиологическая служба наблюдений и контроля поверхностных вод в СССР // Научные основы контроля качества поверхностных вод по гидробиологическим показателям. Л.: Гидрометеоиздат, 1981. С. 7–14.

235. Казанцева Т.И. Балансовая модель экосистемы мелкого высокоэвтрофного озера // Журн. общ. биологии. 2003. Т. 64. № 2. С. 128–145.

236. Камлюк Л.В. Энергетический обмен у свободноживущих плоских и кольчатых червей и факторы его определяющие // Журн. общ. биол. 1974. Т. 35. № 6. C. 874–885.

237. Каратыгин И.В. Грибные организмы и их роль в эволюции экосистем // Ботанический журнал. 1994. Т. 79. № 2. С. 13–20.

238. Карзинкин Г.С. Попытка практического разрешения понятия “биоценоз”: в 2 ч.: Часть II: Влияние различных факторов на биоценоз // Русский зоологический журнал. 1927. № VII (2). С. 34–76.

239. Кариотипы и морфология личинок трибы Chironomini: Атлас. Новосибирск: Наука, 1991. 113 с.

240. Кастальская-Карзинкина М.А. Методика определения живых и мертвых отмерших компонентов планктона на фиксированном материале // Тр. Косинск. лимнол. ст. 1935. Т. 19. С. 91–103.

241. Катанская В.М. Высшая водная растительность континентальных водоемов СССР. Методы изучения. Л: Наука, 1981. 187 с.

242. Кашеваров Г.С., Яковлев В.А. Дрифт беспозвоночных в равнинных реках Предкамья (на примере рек Мёша, Казанка и Нокса). Казань: Изд-во Академии наук Республики Татарстан, 2015. 133 с.

243. Ким Г.В. Водоросли перифитона Телецкого озера // Сибирский экологический журнал. 2011. № 1. С. 33–41.

244. Киричук Н.И., Пивкин М.В. Вторичные морские грибы, ассоциированные с бурыми водорослями рода Sargassum залива Петра Великого (Японское море) // Микология и фитопатология. 2015. Т. 19. Вып. 3. С. 146–150.

245. Кирпенко Н.И., Усенко О.М. Влияние высших водных растений на микроводоросли (обзор) // Гидробиол. журн. 2012. Т. 48. № 6. С. 66–88.

246. Киселев И.А. Планктон морей и континентальных водоемов. Т. 1. Л.: Наука, 1969. 658 с.

247. Киселев И.А. Планктон морей и континентальных водоемов. Т. 2. Распределение, сезонная динамика, питание и значение. Л.: Наука, 1980. 440 с.

248. Китаев С.П. О соотношении некоторых трофических уровней и “шкалах трофности” озер разных природных зон // V съезд Всерос. гидроб. об-ва. Куйбышев, 1986. Ч. 2. С. 254–255.

249. Китаев С.П. Основы лимнологии для гидробиологов и ихтиологов. Петрозаводск: Карельский научный центр РАН, 2007. 395 с.

250. Коваль Л.Г. Зоо- и некропланктон Черного моря. Киев: Наукова Думка, 1984. 234 с.

251. Кожова Л.И., Рыжков Л.П., Полина А.В. Биологический контроль качества вод. М.: Наука, 1989. 144 с.

252. Кожова О.М., Акиншина Т.В. Классификация чистоты вод р. Ангары по состоянию макрозообентоса с использованием выявленных индикаторных групп организмов // Гидробиологические и ихтиологические исследования в Восточной Сибири (Чтения проф. М.М. Кожова). Иркутск: ИГУ, 1979. Вып. 3. С. 55–74.

253. Кожова О.М., Мельник Н.Г. Инструкция по обработке проб планктона счетным методом. Иркутск, 1978. 52 с.

254. Количественные методы в почвенной зоологии / ред. Гиляров М.С., Стриганова Б.Р. М.: Наука. 1987. 288 с.

255. Кольцова Т.И., Конопля Л.Я., Максимов В.И., Федоров В.Д. К вопросу о представительности выборок при анализе фитопланктонных проб // Гидробиол. журнал. 1971. Т. 7. № 3. С. 109–116.

256. Кольцова Т.И., Лихачева Н.Е., Федоров В.Д. О количественной обработке проб фитопланктона. I. Сравнение объемов выборок при исследовании различных структурных характеристик морского фитопланктона// Биологические науки. 1979. № 6. С. 96–100.

257. Кольцова Т.И., Угер Е.Г. О количественной обработке проб фитопланктона. III. Некоторые вопросы распределения фитопланктона в счетной камере // Биологические науки. 1980. № 7. С. 103–108.

258. Комулайнен С.Ф. Методические рекомендации по изучению фитоперифитона в малых реках. Петрозаводск: Карельский научный центр РАН, 2003. 43 с.

259. Комулайнен С.Ф. Экология фитоперифитона малых рек Восточной Фенноскандии. Петрозаводск: Изд-во КарНЦ РАН, 2004. 182 с.

260. Комулайнен С.Ф., Круглова А.Н., Хренников В.В., Широков В.А. Методические рекомендации по изучению гидробиологического режима малых рек. Петрозаводск: Изд-во КарНЦ РАН, 1989. 40 с.

261. Комулайнен С.Ф., Хренников В.В. Питание беспозвоночных эпилиптона в небольшой реке // Проблемы лососевых на Европейском Севере. Петрозаводск: КарНЦ РАН, 1993. С. 89–105.

262. Коновалова Г.В. Паразитические перидинеи (Dinoflagellates) и эллобиопсиды (Ellobiopsidae) прибрежных вод Японского моря // Биология моря. 2007. Т. 33. № 3. С. 167–175.

263. Коновалова О.П., Бубнова Е.Н. Грибы на бурых водорослях Ascophyllum nodosum и Pelvetia canaliculata в Кандалакшком заливе Белого моря // Микология и фитопатология. 2011. Т. 45. Вып. 3. С. 240–248.

264. Константинов А.С. Использование теории множеств в биогеографическом и экологическом анализе // Успехи совр. биологии. 1969. Т. 67. № 1. С. 99–108.

265. Константинов А.С. Общая гидробиология. М.: Высшая школа, 1979. 480 с.

266. Константинов А.С. Общая гидробиология. 4-е изд. М.: Высшая школа, 1986. 472 с.

267. Копылов А.И., Лазарева В.И., Косолапов Д.Б. Потоки вещества и энергии в планктонной трофической сети озера // Состояние экосистемы оз. Неро в начале XXI века. М.: Наука, 2008. С. 293–324.

268. Копылов А.И., Лазарева В.И., Пырина И.Л., Мыльникова З.М., Масленникова Т.С. Микробная “петля” в планктонной трофической сети крупного равнинного водохранилища // Успехи современной биологии. 2010. № 6. С. 544–556.

269. Копытина Н.И. Высшие морские грибы пелагических и донных биотопов северо-западного региона Черного моря. Дисс. … канд. биол. наук. Севастополь, 2009. 210 с.

270. Копытина Н.И. Устройство для ловли мелких предметов, плавающих на поверхности воды: пат. на полезную модель 194104 Российская Федерация. МПК E02B 15/00 (2006.01); E02B 15/10 (2006.01); заявитель и патентообладатель Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр "Институт биологии южных морей имени А.О. Ковалевского РАН" (ФИЦ ИнБЮМ); № 2019127600; заявл. 30.08.2019; опубл. 28.11.2019, Бюл. № 34.

271. Копытина Н.И. Микобиота пелагиали Одесского региона северо-западной части Черного моря // Вестник Томского государственного университета. Биология. 2020. № 52. С. 140–163. DOI:https://doi.org/10.17223/19988591/52/8

272. Копытина Н.И., Бочарова Е.А. Микобиота анаэробной пелагиали Черного моря (по материалам рейсов НИС “Профессор Водяницкий” №№ 87, 89, 91, 94, 98. 2016–2017 гг.): св-во о гос. рег. базы данных 2019621585 Российская Федерация; правообладатель Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр “Институт биологии южных морей имени А.О. Ковалевского РАН”. № 2019621510; заявл. 30.08.2019; опубл. 09.09.2019, Бюл. № 9.

273. Копытина Н.И., Бочарова Е.А., Гулина Л.В. Новые находки культивируемых микромицетов в глубоководных отложениях Черного моря // Труды Института биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН. 2024. Вып. 105(108). С. 45–53. DOI:https://doi.org/10.47021/0320-3557-2024-45-53

274. Копытина Н.И., Лебедовская М.В. Микромицеты – эпибионты гигантской устрицы Crassostrea gigas, культивируемой в Чeрном море // Морський екологічний журнал. 2014. Т. 13. №. 2. С. 41–44.

275. Копытина Н.И., Родионова Н.Ю., Бочарова Е.А. Влияние абиотических факторов на структуру комплексов грибов в пелагиали Чeрного и Азовского морей летом 2019 г. // Вестник Томского государственного университета. Биология. 2023. № 62. С. 109–128. DOI:https://doi.org/10.17223/19988591/62/6

276. Копытина Н.И., Сергеева Н.Г. Ассоциации грибов и нематод в Черном море // Труды Института биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН. 2023. Вып. 102(105). С. 36–46. DOI:https://doi.org/10.47021/0320-3557-2023-36-46

277. Коренева Е.А., Чалова И.В. Эколого-токсикологическая характеристика водоемов на территории Воркутинского промышленного района // Биоиндикация состояния природной среды Воркутинской тундры (Труды Коми научного центра УрО Российской АН; № 143). Сыктывкар, 1996. С. 92–102.

278. Коренева Т.Г., Сигарева Л.Е., Латковская Е.М. Содержание хлорофилла а в донных отложениях мелководной лагуны Буссе (остров Сахалин) // Биология моря. 2021. Т. 47. № 5. С. 339–349.

279. Корляков К.А. Метод "царапанных" стекол обрастания для интенсификации изучения структурно-динамических характеристик перифитона // Вестник совета молодых ученых и специалистов Челябинской области. 2017. Т. 1. № 3(18). С. 5–14.

280. Корляков К.А., Нохрин Д.Ю. Удельная поверхность макрофитов и биомасса зоофитоса различных водоемов Южного Зауралья // Биология внутр. вод. 2011. № 3. С. 30–34.

281. Корнева Л.Г. Фитопланктон Рыбинского водохранилища: состав, особенности распределения, последствия эвтрофирования // Современное состояние экосистемы Рыбинского водохранилища. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. С. 50–113.

282. Корнева Л.Г. Фитопланктон водохранилищ бассейна Волги. Кострома: Костромской печатный дом, 2015. 284 с.

283. Кочарина С.Л. Особенности микрораспределения и продукция популяций личинок трех видов сетеплетущих ручейников на участке плес–перекат метаритрали р. Кедровая в весенне-летний период // Чтения памяти Владимира Яковлевича Леванидова. Вып. 1. Владивосток, 2001. С. 38–54.

284. Крахмальный А.Ф. Динофитовые водоросли Украины (иллюстрированный определитель). Киев: Альтерпрес, 2011. 444 с.

285. Крыжановский С.Г., Дислер Н.Н., Смирнова Е.Н. Эколого-морфологические закономерности развития окуневидных рыб (Percoidae) // Тр. Ин-та морфологии животных им. А.Н. Северцова АН СССР. М.: Изд-во АН СССР. 1953. Вып. 10. С. 3–139.

286. Крылова Ю.В., Курашов Е.А., Митрукова Г.Г. Компонентный состав летучих низкомолекулярных органических соединений Ceratophyllum demersum (Ceratophyllaceae), произрастающего в различных климатических условиях // Вода: химия и экология. 2016. № 8. С. 11–25.

287. Крылова Ю.В., Курашов Е.А., Русанов А.Г. Сравнительный анализ компонентного состава низкомолекулярного метаболома горца земноводного (Persicaria amphibia (L.) Delarbre) из разнотипных местообитаний в Ладожском озере // Труды Карельского научного центра РАН. 2020. № 4. С. 95–114. DOI:https://doi.org/10.17076/lim1141

288. Крылова Ю.В., Курашов Е.А., Протопопова Е.В., Ходонович В.В., Явид Е.Я., Кухарева Г.И. Состав низкомолекулярного метаболома Potamogeton perfoliatus L. как индикатор трансформации экологического состояния литоральной зоны // Биология внутр. вод. 2024. Т. 50. № 4. С. 555–565.

289. Крылов А.В. Зоопланктон равнинных малых рек. М.: Наука, 2005. 263 с.

290. Крылов А.В., Кулаков Д.В., Чалова И.В., Папченков В.Г. Зоопланктон пресных водоемов в условиях влияния гидрофильных птиц / отв. ред. А.И. Копылов. Ижевск: Издатель Пермяков С.А., 2012. 204 с.

291. Крылов А.В., Папченков В.Г., Цельмович О.Л., Косолапова Н.Г., Щербина Г.Х., Скальская И.А., Дгебуадзе Ю.Ю. Развитие основных элементов биоты на разнотипных биотопах реки и ее распределение по продольному профилю // Экосистема малой реки в изменяющихся условиях среды / под ред. Крылова А.В., Боброва А.А. М.: Т-во научн. изд. КМК, 2007. С. 333–349.

292. Крылов А.В., Цветков А.И., Малин М.И. Вертикальное распределение зоопланктона малой реки // Поволжский экологический журнал. 2009. № 1. С. 47–53.

293. Крылов П.И., Чернова Е.Н. Уравнения зависимости массы тела от длины тела хищных кладоцер (Leptodora kindtii (Focke, 1844), Bythtrephes longimanus Leidig, 1860 и Cercopagis pengoi (Ostroumov, 1891)) // Современные проблемы продукционной гидробиологии. М.: Тов. науч. изданий КМК, 2006. С. 175–188.

294. Крючкова Н.М. Эффективность использования пищи зоопланктоном // Биопродуктивность озер Белоруссии. Минск: Белорусский ун-т, 1971. С. 114–135.

295. Крючкова Н.М. Эффективность использования усвоенной пищи на рост у ракообразных // Эффективность роста у гидробионтов. Сб. докладов сессии Белорусского отделения Всес. гидробиол. о-ва, посвященных памяти выдающегося ученого В.С. Ивлева. Минск, январь 1985. Гомель, 1986. С. 62–73.

296. Крючкова Н.М. Структура сообществ зоопланктона в водоемах разного типа // Продукционно-гидробиологические исследования водных экосистем. Л.: ЗИН АН СССР, 1987. С. 184–198.

297. Кузнецов Е.А. Грибные и грибоподобные организмы морских, солоноватоводных и пресноводных водоемов (учебное пособие). М.: Изд-во ООО “Академия цветоводства”, 2003. 120 с.

298. Кузнецов С.И. Микрофлора озер и ее геохимическая деятельность. Ленинград: Наука, 1970. 439 с.

299. Кузнецов С.И., Дубинина Г.А. Методы изучения водных микроорганизмов. М.: Наука, 1989. 288 с.

300. Кузнецова М.А. Структурные перестройки в зоопланктонном сообществе эвтрофированных водоемов с позиций представлений о сукцессии // Экология. 1996. № 1. С. 77–80.

301. Кузнецова М.А., Лаврова Т.В., Баянов Н.Г. К проблеме деэвтрофикации озер // IX Съезд Гидробиологического общества РАН. Тез. докл. Т. 1. Тольятти: Ин-т экологии волжского бассейна, 2006. С. 249.

302. Кузьмин Г.В. Фитопланктон. Видовой состав и обилие // Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. С. 73–87.

303. Кузьмин Г.В. Таблицы для вычисления биомассы водорослей. Препринт. Магадан, 1984. 47 с.

304. Кураков А.В., Кокаева Л.Ю. Методы изучения разнообразия грибов в наземных и водных экосистемах. Учебно-методическое пособие. М.: Изд-во Национальной академии микологии. 2023. 128 с.

305. Курашов Е.А. Мейобентос как компонент озерной экосистемы. СПб: “Алга-Фонд”, 1994. 224 с.

306. Курашов Е.А. Устройство для выделения мейофауны из песчанистых грунтов / Ред. Гидробиол. журн. Киев, 1986. 6 с. Деп. в ВИНИТИ 11.09.86, № 6628-B.

307. Курашов Е.А. Экспериментальное изучение питания литоральных хищников Acanthocyclops viridis Jurine и Atractides (Megapus) gracilis Sokolow мейобентосом в Ладожском озере // Экология. 1989. № 1. С. 42–49.

308. Курашов Е.А. Мейобентос озерных экосистем: экология и реакция на антропогенные воздействия: Автореф. дис. ... докт. биол. наук. СПб., 1997. 52 с.

309. Курашов Е.А. Методы и подходы для количественного изучения пресноводного мейобентоса // Актуальные вопросы изучения микро-, мейозообентоса и фауны зарослей пресноводных водоемов. Тематические лекции и материалы I Международной школы-конференции, Россия, Борок, 2–7 октября 2007 г. Нижний Новгород: Вектор ТиС, 2007а. С. 5–35.

310. Курашов Е.А. Мейобентос в пресноводных экосистемах. Его роль и перспективы исследования // Актуальные вопросы изучения микро-, мейозообентоса и фауны зарослей пресноводных водоемов. Тематические лекции и материалы I Международной школы-конференции, Россия, Борок, 2–7 октября 2007 г. Нижний Новгород: Вектор ТиС, 2007б. С. 36–71.

311. Курашов Е.А., Распопов И.М., Андроникова И.Н. Литоральная зона (термины, понятия, проблематика, история изучения, описание точек отбора) // Литоральная зона Ладожского озера. СПб.: Нестор-История, 2011. 416 с.

312. Курашов Е.А., Крылова Ю.В. Низкомолекулярные вторичные метаболиты высших водных растений и перспективы управления автотрофным звеном в водных экосистемах // Биология внутр. вод: Мат. XV Школы-конференции молодых уч. (Борок, 19–24 октября 2013 г.). Кострома: ООО “Костромской печатный дом”, 2013. С. 29–60.

313. Курашов Е.А., Крылова Ю.В., Егорова А.А., Сущенко А.С., Ходонович В.В., Явид Е.Я. Перспективы использования низкомолекулярного метаболома водных макрофитов для индикации экологического состояния водных экосистем // Вода: химия и экология. 2018а. № 1–3. С. 68–79.

314. Курашов Е.А., Федорова Е.В., Крылова Ю.В. Использование метода QSAR для выявления наиболее перспективных аллелохемиков в отношении цианобактерий // Российский журнал прикладной экологии. 2018б. № 4 (16). С. 56–61.

315. Курашов Е.А., Крылова Ю.В., Русанов А.Г. Изменение низкомолекулярного метаболома чужеродного вида Potamogeton pectinatus L. в Ладожском озере в сравнении с нативным ареалом // Российский журнал биологических инвазий. 2020. Т. 13. № 2. С. 74–95.

316. Курашов Е.А., Крылова Ю.В., Русанов А.Г., Явид Е.Я., Ходонович В.В. Закономерности формирования низкомолекулярного метаболома макрофитов // Современное состояние и проблемы антропогенной трансформации экосистемы Ладожского озера в условиях изменяющегося климата / Ред. Кондратьев С.А., Поздняков Ш.Р., Румянцев В.А. СПб: РАН, 2021. С. 425–431.

317. Кутикова Л.А., Гутельмахер Б.Л. Влияние состава пищи на рост и размножение Asplanchna brightwelli Gosse (Rotatoria) // Экспериментальные и полевые исследования биологических основ продуктивности озер. Л.: Зоол. ин-т АН СССР, 1979. С. 21–28.

318. Лазарева В.И. Зоопланктон малых озер Дарвинского заповедника в связи с индикацией антропогенного закисления. Дисс. … канд. биол. наук. Борок, 1991. 198 с.

319. Лазарева В.И. Число видов и таксономическое разнообразие в сообществах зоопланктона малых озер, подверженных закислению // Зооценозы водоемов бассейна верхней Волги в условиях антропогенного воздействия. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. С. 3–19.

320. Лазарева В.И. Трансформация сообществ зоопланктона малых озер при закислении // Структура и функционирование экосистем ацидных озер. СПб.: Наука, 1994. С. 150–169.

321. Лазарева В.И. Многолетние вариации структуры зоопланктона Рыбинского водохранилища // Водные ресурсы. 1997. № 1. С. 90–96.

322. Лазарева В.И. Сезонный цикл развития и питание хищных коловраток Asplanchna priodonta Gosse в Рыбинском водохранилище // Биология внутр. вод. 2004. № 4. С. 59–68.

323. Лазарева В.И. Сравнительный анализ состава и обилия летнего зоопланктона Рыбинского водохранилища в 1987–1988 гг. и 1997–2004 гг. // Биологические ресурсы пресных вод: беспозвоночные. Рыбинск: Изд-во ОАО “Рыбинский дом печати”, 2005. С. 182–224.

324. Лазарева В.И. Динамика структуры и обилия зоопланктона Рыбинского водохранилища как индикатор флуктуаций климата и антропогенного пресса в бассейне Верхней Волги // Биоиндикация в мониторинге пресноводных экосистем. Сб. материалов Междунар. конф. СПб.: ЛЕМА, 2007. С. 240–244.

325. Лазарева В.И. Сопоставимость различных методов сбора зоопланктона в равнинном водохранилище // Экология и морфология беспозвоночных континентальных вод / ред. Крылов А.В. Махачкала: Изд-во Наука ДНЦ, 2010а. С. 251–261.

326. Лазарева В.И. Структура и динамика зоопланктона Рыбинского водохранилища / ред. Копылов А.И. М.: Т-во научн. изданий КМК, 2010б. 183 с.

327. Лазарева В.И. Расселение чужеродных понто-каспийских видов зоопланктона в водохранилищах Волги и Камы // Российский журнал биологических инвазий. 2019. № 3. С. 29‒52.

328. Лазарева В.И. Многолетние изменения состава и обилия зоопланктона водохранилищ р. Камы // Биология внутр. вод. 2020. № 3. С. 260‒275. DOI:https://doi.org/10.31857/S0320965220030110

329. Лазарева В.И. Распространение некоторых понто-каспийских и чужеродных копепод (Crustacea, Copepoda) в планктоне водоемов бассейна реки Дон // Российский журнал биологических инвазий. 2022а. № 3. С. 79–98. DOI:https://doi.org/10.35885/1996-1499-15-3-79-98

330. Лазарева В.И. Состав, структура и особенности пространственного распределения зоопланктона в Шекснинском водохранилище (Верхняя Волга, Россия) // Биология внутр. вод. 2022б. № 6. С. 711–724. DOI:https://doi.org/10.31857/S0320965222060122

331. Лазарева В.И. Трофические взаимодействия в зоопланктоне Цимлянского водохранилища (р. Дон, Россия) // Биология внутр. вод. 2022в. № 3. С. 264–277. DOI:https://doi.org/10.31857/S0320965222030135

332. Лазарева В.И., Минеева Н.М., Лаптева Н.А. и др. Особенности продуцирования и деструкции органического вещества в болотных озерах, испытывающих воздействие кислотных атмосферных осадков // Биология внутр. вод. 2000. № 2. С. 77–80.

333. Лазарева В.И., Лебедева И.М., Овчинникова Н.К. Изменения в сообществе зоопланктона Рыбинского водохранилища за 40 лет // Биология внутр. вод. 2001. № 4. С. 62–73.

334. Лазарева В.И., Жгарева Н.Н., Гусаков В.А., Иванов В.К. Структура трофической сети сообществ беспозвоночных в трех небольших озерах с различным уровнем закисления вод: зоопланктон // Биология внутр. вод. 2003. № 1. С. 49–57.

335. Лазарева В.И., Смирнова С.М., Фролова А.Н. Доминантные комплексы ракообразных и коловраток высокоэвтрофного оз. Неро (Ярославская обл.) // Биология внутр. вод. 2007. № 1. С. 61–72.

336. Лазарева В.И., Смирнова С.М. Ракообразные и коловратки // Состояние экосистемы оз. Неро в начале XXI века. М.: Наука, 2008. С. 175–210.

337. Лазарева В.И., Копылов А.И. Продуктивность зоопланктона на пике эвтрофирования экосистемы равнинного водохранилища: значение беспозвоночных хищников // Успехи современной биологии. 2011. Т. 131. № 3. С. 300–310.

338. Лазарева В.И., Соколова Е.А. Метазоопланктон равнинного водохранилища в период потепления климата: биомасса и продукция // Биология внутр. вод. 2015. № 3. С. 30. DOI:https://doi.org/10.7868/S0320965215030092

339. Лазарева В.И., Копылов А.И., Соколова Е.А., Пряничникова Е.Г. Велигеры дрейссенид в трофической сети планктона Рыбинского водохранилища // Поволжский экологический журнал. 2015. № 1. С. 42–54.

340. Лазарева В.И., Соколова Е.А. Обеспеченность пищей планктофагов в Рыбинском водохранилище в условиях потепления климата: динамика и продуктивность зоопланктона // Гетеротрофное звено внутренних и контурных сообществ пресноводных экосистем. Ярославль: Филигрань, 2016. Тр. Ин-та биологии внутренних вод РАН. Вып. 74 (77). С. 77–92.

341. Лазарева В.И., Сабитова Р.З., Соколова Е.А. Особенности структуры и распределения позднелетнего (август) зоопланктона в водохранилищах Волги // Тр. Ин-та биологии внутренних вод РАН. 2018. Вып. 82(85). С. 28–51. DOI:https://doi.org/10.24411/0320-3557-2018-1-0011

342. Лазарева В.И., Степанова И.Э., Цветков А.И., Пряничникова Е.Г., Перова С.Н. Изменение кислородного режима водохранилищ Волги и Камы в период потепления климата: последствия для зоопланктона и зообентоса // Тр. Ин-та биологии внутренних вод РАН. 2018. Вып. 81(84). С. 47–84. DOI:https://doi.org/10.24411/0320-3557-2018-1-0005

343. Лазарева В.И., Сабитова Р.З. Раннелетний зоопланктон озер Воже и Лача (Вологодская область) // Тр. Ин-та биологии внутренних вод РАН. 2021. Вып. 94(97). С. 56‒76. DOI:https://doi.org/10.47021/0320-3557-2021-56-76

344. Лакин Г.Ф. Биометрия. Учебное пособие для биол. спец. вузов, 4-е изд., перераб. и доп. М.: Высшая школа, 1990. 352 с.

345. Лебедев Ю.М. Что такое малая река? // Малые реки: Современное экологическое состояние, актуальные проблемы. Тольятти, 2001. С. 154.

346. Леванидов В.Я. Воспроизводство амурских лососей и кормовая база их молоди в притоках Амура // Изв. ТИНРО. 1969. Т. 67. 243 с.

347. Леванидов В.Я. Биомасса и структура донных биоценозов малых водотоков Чукотского полуострова // Пресноводная фауна водотоков Чукотского полуострова, Владивосток, 1976. С. 104–122.

348. Леванидов В.Я. Биомасса и структура донных биоценозов реки Кедровой // Пресноводная фауна заповедника “Кедровая падь”. Тр. Биол.-почв. ин-та ДВНЦ АН СССР. Владивосток: ДВНЦ АН СССР, 1977. Т. 45 (148). С. 126–159.

349. Леванидов В.Я., Леванидова И.М. Дрифт водных насекомых в реке Амур // Систематика и экология рыб континентальных водоемов Дальнего Востока. Владивосток: ДВНЦ АН СССР, 1979. С. 3–29.

350. Леванидова И.М. Амфибиотические насекомые горных областей Дальнего Востока СССР. Л.: Наука, 1982. 215 с.

351. Леванидова И.М., Леванидов В.Я. К вопросу о миграциях донных беспозвоночных в толще воды Дальневосточных рек // Изв. ТИНРО. 1962. Т. 48. С. 178–189.

352. Леванидова И.М., Николаева Е.Т. Бентосток в реках Камчатки // Изв. ТИНРО. 1968. Т. 64. С. 291–299.

353. Литвинов М.А. Методы изучения почвенных микроскопических грибов. Л.: Наука, 1969. 124 с.

354. Литвинов М.А., Дудка И.А. Методы исследования микроскопических грибов пресных и соленых (морских) водоемов. Л.: Наука, 1975. 151 с.

355. Литвинюк Д.А. Морской зоопланктон и методические проблемы его изучения: Диссертация ... канд. биол. наук: 03.02.10 / М: МГУ, 2015. 147 с.

356. Лихачева Н.Е., Левич А.П., Кольцова Т.И. О количественной обработке проб фитопланктона. II. Ранговое распределение численности фитопланктона пролива Вилькицкого // Биологические науки. 1979. № 9. С. 102–106.

357. Лоскутова О.А., Пономарев В.И. Фауна водоемов бассейна р. Малый Паток (Приполярный Урал). II. Беспозвоночные // Биология внутр. вод. 2019. № 4–2. С. 8–15. DOI:https://doi.org/10.1134/S0320965219040272.

358. Луферов В.П. Краткая сравнительная характеристика эпифауны затопленных лесов волжских водохранилищ // Планктон и бентос внутренних водоемов. Тр. Ин-та биологии внутренних вод. 1966. Вып. 8(2). С. 16–20.

359. Луферова Л.А., Монаков А.В. Зоопланктон Рыбинского водохранилища в 1956–1963 гг. // Планктон и бентос внутренних водоемов. Л.: Наука, 1966. С. 40–55.

360. Лысенко В.С., Вардуни Т.В., Сойер В.Г., Краснов В.П. Флуоресценция хлорофилла растений как показатель экологического стресса: теоретические основы применения метода // Фундаментальные исследования. 2013. № 4. С. 112–120.

361. Любименко В.Н. Хлорофилл в отложениях озерного ила // Журн. Русск. ботан. общества. 1923. № 6. С. 97–105.

362. Ляхов С.М., Жидков Л.Ф. Донная ловушка – прибор для изучения сноса донных организмов в речном потоке // Зоол. журн. 1953. Т. 32. Вып. 5. С. 1020–1024.

363. Макаревич Т.А. Вклад перифитона в суммарную первичную продукцию пресноводных экосистем (обзор) // Вестник Тюменского гос. ун-та. 2005. № 5. С. 77.

364. Макарцева Е.С. Изменение структуры и количественных показателей зоопланктона при повышении уровня трофии озер // Изменение структуры экосистем озер в условиях возрастающей биогенной нагрузки. Л.: Наука, 1988. С. 221–241.

365. Макрушин А.В. Биологический анализ качества вод. Л.: ЗИН АН СССР, 1974. 60 с.

366. Макрушин А.В. Биоиндикация загрязнений внутренних водоемов // Биологические методы оценки природной среды. М.: Наука, 1978. С. 123–137.

367. Макрушин А.В. Ангидробиоз первичноводных беспозвоночных: сохранение жизнеспособности в высушенном состоянии. Л.: Наука, 1985. 104 с.

368. Максимов В.Н. Метрологические свойства индексов сходства (в приложении к биологическому анализу качества вод) // Комплексные оценки качества поверхностных вод. Л.: Гидрометеоиздат, 1984. С. 77–84.

369. Максимов В.Н., Житина Л.С. Бета-разнообразие экологических сообществ: метод измерения и использование при анализе результатов экологического мониторинга. Сообщение 1 // Вестн. МГУ. Сер. 16. Биология. 1997. № 2. С. 22–24.

370. Маркевич Г.И. Суточная динамика вертикального распределения массовых форм зоопланктона в оз. Сиверском // Экология водных организмов верхневолжских водохранилищ. Л.: Наука, 1982. С. 100–122.

371. Мартынова М.В. Азот и фосфор в донных отложениях озер и водохранилищ. М.: Наука, 1984. 160 с.

372. Марфенина О.Е. Антропогенная экология почвенных грибов. М.: Медицина для всех. Национальная Академия Микологии, 2005. 196 с.

373. Марченко А.М. Грибы – возбудители микозов рыб на рыбоводных заводах Сахалина // Микология и фитопатология. 1988. Т. 22. Вып. 3. С. 212–216.

374. Мастаков И.А. Имитационная модель распределения субстратов для мшанок на участке реки Вологды // ХVI Ежегодная научная сессия аспирантов и молодых ученых: Мат. Всерос. науч. конф. В 3-х т. Вологда, 29 ноября 2022 г. / Гл. ред. Караганова М.М. Т. 1. Вологда: Вологодский государственный университет, 2023. С. 557–561.

375. Масюк Н.М., Радченко М.И. Методы сбора и изучения водорослей // Водоросли. Справочник. Киев: Наукова думка, 1989. С. 170–188.

376. Матковский А.К. К оценке экологического состояния водоемов по гидробиологическим показателям // VII съезд Всерос. гидроб. об-ва: тез. докл. Т. 1. Казань, 1996. С. 67–69.

377. Маторин Д.Н., Осипов В.А., Венедиктов П.С., Рубин А.Б. Замедленная флуоресценция растений и водорослей: теоретические и практические аспекты. М.: Альтекс, 2011. 220 с.

378. Мессинева М.А., Успенская В.И. Специальные приемы и методы количественной характеристики биоценозов обрастаний // Биоценозы обрастаний в качестве биопоглотителя (новый способ предварительной очистки воды для целей водоснабжения). М.: МГУ, 1961. С. 117–142.

379. Метелёва Н.Ю., Девяткин В.Г. Формирование и продуктивность перифитона Рыбинского водохранилища: первичная продукция // Биология внутр. вод. 2005. № 3. С. 44.

380. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов / Под ред. Ф.Д. Мордухай-Болтовского. М.: Наука, 1975. 240 с.

381. Методика определения последствий негативного воздействия при строительстве, реконструкции, капитальном ремонте объектов капитального строительства, внедрении новых технологических процессов и осуществлении иной деятельности на состояние водных биологических ресурсов и среды их обитания и разработки мероприятий по устранению последствий негативного воздействия на состояние водных биологических ресурсов и среды их обитания, направленных на восстановление их нарушенного состояния. Приложение к приказу Федерального агентства по рыболовству от 6 мая 2020 г. № 238. ВНИРО, 2020. 23 с.

382. Методические вопросы изучения первичной продукции планктона внутренних водоемов / Под ред. Пыриной И.Л. СПб: Гидрометеоиздат, 1993. 168 с.

383. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресноводных водоемах: Зообентос и его продукция / Под ред. Салазкина А.А., Алимова А.Ф., Финогеновой Н.П. Л.: ГосНИОРХ, 1984. 52 с.

384. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресноводных водоемах. Зоопланктон и его продукция. Л.: Гос. ин-т озер. и реч. рыбного хоз-ва, Зоол. ин-т АН СССР, 1984. 34 с.

385. Методические указания к занятиям спецпрактикума по разделу “Микология. Методы экспериментального изучения микроскопических грибов” для студентов 4 курса дневного отделения специальности “G 31 01 01 – Биология” / Авт.-сост. Поликсенова В.Д., Храмцов А.К., Пискун С.Г. Минск.: БГУ, 2004. 36 с.

386. Методические указания по осуществлению государственного мониторинга водных объектов в части организации и проведения наблюдений за содержанием загрязняющих веществ в донных отложениях водных объектов. Утверждены приказом Минприроды России от 24.02.2014 № 112.

387. Методы исследования донных отложений озер Карелии / Шелехова Т.С., Слуковский З.И., Лаврова Н.Б. Петрозаводск: Карельский научный центр РАН, 2020. 111 с.

388. Методы определения продукции водных организмов. Минск: Выщэйшая школа, 1968. 245 с.

389. Методы оценки качества вод по гидробиологическим показателям: учебно-методическая разработка по курсу “Гидробиология” / сост.: Деревенская О.Ю. Казань: КФУ, 2015. 44 с.

390. Методы почвенно-зоологических исследований / под ред. Гилярова М.С. М.: Наука. 1975. 280 с.

391. Методы экспериментальной микологии. Справочник / ред. Билай В.И. Киев: Наукова думка, 1982. 550 с.

392. Микология: основные понятия и термины. Учебно-методическое пособие по микологии для студентов специальностей “G 31 01 01 – Биология”, “H 33 01 01 – Биоэкология” и направления “G 31 01 01-03 – Биотехнология”. Минск, 2003. 123 с.

393. Микроорганизмы как агенты биомониторинга и биоремедиации загрязненных почв / Под общ. ред. Ашихминой Т.Я., Домрачевой Л.И. Киров: Науч. изд. ВятГУ, 2018. 254 с.

394. Милько А.А., Захарова Л.И. Роль микофлоры Волги и некоторых северных водоемов в процессах самоочищения и биоиндикации вод // Водные ресурсы. 1984. № 2. С. 94–98.

395. Минеева Н.М. Растительные пигменты как показатель состояния экосистемы водохранилищ. Пигменты планктона // Современная экологическая ситуация в Рыбинском и Горьковском водохранилищах: состояние биологических сообществ и перспективы рыборазведения. Ярославль: ЯГТУ, 2000. С. 66–83.

396. Минеева Н.М. Растительные пигменты в воде волжских водохранилищ. М.: Наука, 2004. 156 с.

397. Минеева Н.М. Содержание фотосинтетических пигментов в водохранилищах Верхней Волги (1994–2003 гг.) // Биология внутр. вод. 2006. № 1. С. 31–40.

398. Минеева Н.М. Первичная продукция планктона в водохранилищах Волги. Ярославль: Принтхаус, 2009. 279 с.

399. Минеева Н.М. Сезонная и межгодовая динамика хлорофилла в планктоне Рыбинского водохранилища по данным флуоресцентной диагностики // Тр. Ин-та биол. внутр. вод им. И.Д. Папанина РАН. 2016. Вып. 76 (78). С. 75–93.

400. Минеева Н.М., Метелёва Н.Ю. Cравнительная характеристика продуктивности фитопланктона и эпифитона водохранилищ Верхней Волги // Биология внутр. вод. 2019. № 2. Вып. 2. С. 33. DOI:https://doi.org/10.1134/S0320965219030148.

401. Минеева Н.М., Мухутдинов В.Ф. Сравнительная оценка содержания хлорофилла в водохранилищах Верхней Волги по данным спектрофотометрического и флуоресцентного методов // Вода: химия и экология. 2016. № 4. С. 3–9.

402. Минеева Н.М., Попельницкий В.А. Определение фотосинтеза фитопланктона Рыбинского водохранилища флуоресцентным и кислородным методами // Биология внутр. вод: Информ. бюл. 1990. № 88. С. 20–24.

403. Миркин Б.М. Проблема соотношения непрерывности и дискретности и современная экология // Журн. общей биологии. 2005. Т. 66. № 6. С. 522–526.

404. Миркин Б.М., Розенберг Г.С. Толковый словарь современной фитоценологии. М.: Наука, 1983. 133 с.

405. Мирчник Т.Г. Почвенная микология. Учебник. М.: Изд-во МГУ, 1988. 220 с.

406. Мисейко Г.Н., Безматерных Д.М., Тушкова Г.И. Биологический анализ качества пресных вод. Барнаул: Изд-во Алт. ун-та, 2001. 201 с.

407. Мокиевский В.О. Экология морского мейобентоса. М.: КМК, 2009. 286 с.

408. Монаков А.В. Питание и пищевые взаимоотношения пресноводных копепод. Л.: Наука, 1976. 170 с.

409. Монаков А.В. Питание пресноводных беспозвоночных. М: ИПЭЭ РАН, 1998. 322 с.

410. Монченко В.I. Щелепноротi циклопоподiбнi. Циклопи (Cyclopidae) // Фауна України. Київ: Наукова думка, 1974. Т. 27. № 3. 452 с.

411. Мордухай-Болтовской Ф.Д. Материалы по среднему весу водных беспозвоночных бассейна Дона // Проблемы гидробиологии внутренних вод: Тр. проблем. и тематич. совещ. М.-Л.: ЗИН АН СССР, 1954. Вып. 2. С. 223–241.

412. Мордухай-Болтовской Ф.Д. Усовершенствованная система трубчатого дночерпателя // Биология внутр. вод: Информ. бюл. Л.: Наука, 1958. № 1. С. 47–49.

413. Мордухай-Болтовской Ф.Д. Фауна беспозвоночных прибрежной зоны Рыбинского водохранилища (общий обзор) // Труды Дарвинского государственного заповедника на Рыбинском водохранилище. 1974. Вып 12. С. 158–185.

414. Мордухай-Болтовской Ф.Д. Исследования мелководной прибрежной зоны водохранилищ Верхней Волги // Гидробиологический режим прибрежных мелководий Верхневолжских водохранилищ. Ярославль: Ин-т биологии внутр. вод, 1976. С. 3–12.

415. Мордухай-Болтовской Ф.Д., Дзюбан Н.А. Формирование фауны беспозвоночных крупных водохранилищ // Экология водных организмов. М.: Наука, 1966. С. 98–102.

416. Мороз Т.Г. Сравнение различных методов оценки качества воды по индикаторным донным беспозвоночным // Гидробиол. журнал. 1978. № 3. С. 115–118.

417. Мухин И.А. Формирование перифитонных цилиосообществ на разнотипных субстратах. Вологда: Вологодский государственный университет, 2020. 159 с.

418. Мухин И.А., Лопичева Г.О. Экологическая ниша перифитонных инфузорий в планктоне прибрежных вод Костромского разлива Горьковского водохранилища // Озерные экосистемы: биологические процессы, антропогенная трансформация, качество воды: Мат. V Междун. научн. конф. Минск – Нарочь, 12–17 сентября 2016 г. Минск – Нарочь: Белорусский государственный университет, 2016. С. 237–238.

419. Мэгарран Э.Е. Экологическое разнообразие и его измерение. М.: Мир, 1992. 198 с.

420. Мяэметс А.Х. Изменения зоопланктона // Антропогенное воздействие на малые озера. Л.: Наука, 1980. С. 54–64.

421. Набережный А.И., Ирмашева С.Г. Соотношение размеров и массы тела у гарпактицид (Crustacea: Harpacticoida) // Изв. АНМССР. Сер. биол. и хим. наук. 1980. № 4. С. 75–76.

422. Науменко Е.Н. Структурно-функциональная организация зоопланктона Вислинского залива Балтийского моря. Калининград: Атлант. НИИ рыб. хоз-ва и океанографии, 2010. 198 с.

423. Науменко Е.Н., Хлопников М.М., Рудинская Л.В. Потоки энергии в экосистеме Вислинского (Калининградского) залива Балтийского моря // Журнал Сиб. фед. ун-та. Биология. 2012. № 5. С. 184–202.

424. Неврова Е.Л., Петров А.Н. Таксономическое разнообразие диатомовых бентоса Черного моря // Микроводоросли Черного моря: проблемы сохранения биоразнообразия и биотехнологического использования / Ред. Ю.Н. Токарев, З.З. Финенко, Н.В. Шадрин. НАН Украины / Институт биологии южных морей. Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2008. С. 60–85.

425. Неврова Е.Л., Снигирева А.А., Петров А.Н., Ковалева Г.В. Руководство по изучению морского микрофитобентоса и его применению для контроля качества среды / Ред. Гаевская А.В. Севастополь–Симферополь: Н. Орiанда, 2015. 176 с.

426. Николаев А.М., Алексеев М.Ю. Сезонная и суточная динамика дрифта беспозвоночных в лососевой р. Кола (Кольский полуостров) // Научные труды Дальрыбвтуза. 2017. Т. 41. № 2. С. 43–49.

427. Обозначения, единицы измерения и эквиваленты, встречаемые при изучении продуктивности пресных вод. Л.: Советский комитет по МБП, 1972. 35 с.

428. Общие основы изучения водных экосистем. Л.: Наука, 1979. 271 с.

429. Овчинникова Т.А, Кремс Е.В, Корчиков Е.С. Сезонная динамика микобиоты листовой поверхности древесных растений городской среды // Вестник СамГУ. 2013. Т. 107. № 6. С. 188–195.

430. Одесский регион Черного моря: гидробиология пелагиали и бентали / под общ. ред. Б.Г. Александрова. Одесса: Астропринт, 2017. 324 с.

431. Одум Ю. Основы экологии. М.: Мир, 1975. 740 с.

432. Одум Ю. Экология: В 2-х т. М.: Мир, 1986. Т. 1. 328 с.; Т. 2. 376 с.

433. Определитель насекомых Дальнего Востока России. Т. VI. Двукрылые и блохи. Ч. 4. Владивосток: Дальнаука, 2006. 936 с.Определитель пресноводных беспозвоночных Европейской части СССР: планктон и бентос. Л.: Гидрометеоиздат, 1977. 510 с.

434. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 1. Низшие беспозвоночные. СПб.: Наука, 1994. 394 с.

435. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 2. Ракообразные. СПб.: Наука, 1995. 627 с.

436. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. 2000. Т. 3. Паукообразные. Низшие насекомые. СПб.: Наука, 1997. 439 с.

437. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 4. Высшие насекомые. СПб.: Наука, 2000. 998 с.

438. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 5. Высшие насекомые. СПб.: Наука, 2001. 836 с.

439. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 6. Моллюски. Полихеты. Немертины. СПб.: Наука, 2004. 528 с.

440. Определитель рыб и беспозвоночных Каспийского моря. Т. 1. Рыбы и моллюски. СПб.-M.: Т-во научных изданий КМК, 2013. 543 с.

441. Определитель рыб и беспозвоночных Каспийского моря. T. 2. Стрекающие, гребневики, многощетниковые черви, веслоногие ракообразные и мизиды. СПб.-M.: Т-во научных изданий КМК, 2015. 244 с.

442. Остапеня А.П. Деэвтрофирование или бентификация? // Озерные экосистемы: биологические процессы, антропогенная трансформация, качество воды. Мат. III Междунар. науч. конф. Минск: Изд. центр. Белорусского гос. ун-та, 2007. С. 31–32.

443. Охапкин А.Г., Воденеева Е.Л., Старцева Н.А., Хедаириа Т. Методы изучения фитобентоса пресных водоемов // Экологический мониторинг. Часть X: учебное пособие / под ред. проф. Гелашвили Д.Б. Нижний Новгород: Нижегородский госуниверситет, 2019. С. 79–96.

444. Павельева Е.Б., Сорокин Ю.И. Оценка уловистости зоопланктона различными орудиями лова // Биология внутр. вод. Информ. бюл. 1972. № 15. С. 75–78.

445. Павлюк Т.Е. Актуальные вопросы биоиндикации водных экосистем: российский опыт и перспективы // Водное хозяйство России: проблемы, технологии, управление. 2024. № 4. С. 108–126. DOI:https://doi.org/10.35567/19994508-2024-4-108-126

446. Палий В.Ф. Методика изучения фауны и фенологии насекомых. Воронеж. 1970. 189 с.

447. Панкратова В.Я. Личинки и куколки комаров подсемейств Orthocladiinae фауны СССР (Diptera, Chironomidae = Tendipedidae). Л.: Наука, 1970. 343 c.

448. Панкратова В.Я. Личинки и куколки комаров подсемейств Podonominae и Tanypodinae фауны СССР (Diptera, Chironomidae = Tendipedidae). Л.: Наука, 1977. 152 с.

449. Панкратова В.Я. Личинки и куколки комаров подсемейства Chironominae фауны СССР (Diptera, Chironomidae = Tendipedidae). Л.: Наука, 1983. 295 с.

450. Панов В.Е. Питание бокоплавов Gammarus lacustris Sars // Сообщества пресноводных беспозвоночных в зарослях макрофитов. Л.: ЗИН АН СССР, 1988. С. 144–150.

451. Панов В.Е., Полякова Е.А. Питание, рост и продукция турбеллярий // Сообщества пресноводных беспозвоночных в зарослях макрофитов. Л.: ЗИН АН СССР, 1988. С. 118–127.

452. Паньков Н.Н. Основные итоги изучения дрифта реки Сылвы (заказник “Предуралье”, 1997–2004 гг.) // Вестник Пермского университета. Серия: Биология. 2007. Вып. 5 (10). С. 83–89.

453. Папченков В.Г. Растительный покров водоемов и водотоков Среднего Поволжья. Ярославль: ЦМП МУБиНТ, 2001. 200 с.

454. Пареле Э.А., Астопенюк Е.Б. Тубифициды (Oligochaeta, Tubificidae) – индикаторы качества водоемов // Изв. АН ЛатвССР. 1975. № 9. С. 44–46.

455. Переведенцева JI.Г. Микология: грибы и грибоподобные организмы: Учебник. 2-е изд., испр. и доп. СПб.: Издательство “Лань”, 2012. 272 с.

456. Песенко Ю.А. Принципы и методы количественного анализа в фаунистических исследованиях. М.: Наука, 1982. 286 c.

457. Пестерев П.Н, Хардикова С.А. Псевдомикозы и глубокие микозы: учебное пособие. Томск: Издательство СибГМУ, 2020. 167 c.

458. Петров А.Н., Неврова Е.Л. Прогностическая оценка видового богатства бентосных диатомовых водорослей // Альгология. 2012. Т. 22. № 4. С. 360–382.

459. Петрович П.Г. Озеро Мястро. Озеро Нарочь. Озеро Баторино // Многолетние показатели развития зоопланктона озер. М.: Наука, 1973. С. 7–123.

460. Пивкин М.В., Алешко С.А., Красохин Б.В., Худякова Ю.В. Комплексы грибов губок у южного побережья острова Сахалин // Биология моря. 2006. Т. 32. № 4. С. 249–254.

461. Пидгайко М.Л. Зоопланктон водоемов Европейской части СССР. М.: Наука, 1984. 206 с.

462. Полищук Л.В. Динамические характеристики популяций планктонных животных. М.: Наука, 1986. 128 с.

463. Полищук Л.В., Романовский Ю.Э. Теоретический подход к расчету продукции водных животных // Журнал общей биологии. 1980. Т. 41. № 65. С. 645–654.

464. Полякова Е.А. Питание пиявок // Сообщества пресноводных беспозвоночных в зарослях макрофитов. Л.: ЗИН АН СССР, 1988. С. 127–133.

465. Попченко В.И. Биоиндикация качества воды по сообществам олигохет // Биоиндикация: теория, методы, приложения. Тольятти, 1994. С. 232–237.

466. Попченко В.И. Использование сообществ донных беспозвоночных в биомониторинге пресных вод // Изв. Самар. НЦ РАН. 1999. № 2. С. 212–216.

467. Практическая гидробиология. Пресноводные экосистемы: Учебник для студентов, обучающихся по направлению 020200 Биология, специальности Биоэкология и другим биологическим специальностям / Федоров В.Д., Ильинский В.В., Капков В.И. и др. М.: ПИМ, 2006. 367 с.

468. Пржиборо А.А. Экология и роль бентосных двукрылых (Insecta: Diptera) в прибрежных сообществах малых озер Северо-Запада России. Автореф. дисс. … канд. биол. наук. СПб., 2001. 25 с.

469. Производственная компания “ЭБИСУ”, г. Королев. Электронный ресурс. URL: https://abisu.ru/produkxiya/ (обращение 27 июня 2023 г.)

470. Прокин А.А., Селезнев Д.Г. Структура макрозообентоса пойменных озер в условиях разной продолжительности весеннего половодья // Биология внутр. вод. 2021. № 5. С. 501–509.

471. Прокопенко Е.В. Пауки (AraneI) урочища Грабовое (Пятихатский район Днепропетровской области) // Проблемы экологии и охраны природы техногенного региона. 2018. № 1–2. C. 63–70.

472. Протасов А.А. К методике отбора проб перифитона с неживых субстратов // Гидробиол. журнал. 1985. Т. 21. № 6. C. 82–83.

473. Протасов А.А. Методы исследования перифитона. Рук. деп. в ВИНИТИ, 1987. № 2164-B87. 35 с.

474. Протасов А.А. Пресноводный перифитон. Киев: Наукова думка, 1994. 308 с.

475. Протасов А.А. Биоразнообразие и его оценка. Концептуальная диверсикология. Киев: Ин-т гидробиол. НАНУ, 2002. 105 с.

476. Протасов А.А. Старые и новые проблемы исследования перифитона // Биология внутр. вод. 2005. № 3. С. 3–11.

477. Протасов А.А. О топических отношениях и консортивных связях в сообществах // Сибирский экологический журнал. 2006. Т. 13. № 1. С. 97–103.

478. Протасов А.А. Перифитон как экотопическая группировка гидробионтов // Журн. Сибирского федерального ун-та. Биология. 2010. № 1. Р. 40–56.

479. Протасов А.А. Жизнь в гидросфере. Очерки по общей гидробиологии. Киев: Академпериодика, 2011. 704 с.

480. Протасов А.А., Павлюк Т.Е. Использование показателей биоразнообразия для оценки состояния водных объектов и качества вод // Гидробиол. журн. 2004. Т. 40. № 6. С. 3–17.

481. Пряничникова Е.Г., Цветков А.И. Основные характеристики популяции Dreissena polymorpha (Bivalvia, Dreissenidae) в озере Плещеево // Трансформация экосистем. 2018. № 2. С. 73–80.

482. Пшеницына В.Н. Об эффективности шкалы Вудивисса при биоиндикации качества воды // Гидробиол. журн. 1986. Т. 24. № 4. С. 42–45.

483. Пырина И.Л. Определение первичной продукции фитопланктона по максимальному фотосинтезу, суммарной солнечной радиации и прозрачности воды // Гидробиол. журн. 1979. Т. 15. № 6. С. 115–119.

484. Пырина И.Л., Сигарева Л.Е. Содержание пигментов фитопланктона в Рыбинском водохранилище в различные по гидрометеорологическим условиям годы (1972–1976) // Биология и экология водных организмов. Труды ИБВВ АН СССР. Вып. 53(56). Л., 1986. С. 65–89.

485. Радченко И.Г., Капков В.И., Федоров В.Д. Практическое руководство по сбору и анализу проб морского фитопланктона: Учебно-методическое пособие для студентов биологических специальностей университетов. М.: Мордвинцев, 2010. 60 с.

486. Раилкин А.И. Колонизация твердых тел бентосными организмами. СПб: СПбГУ, 2008. 427 с.

487. Раилкин А.И., Бабков А.И. Стандартизация биологических испытаний. II. Различия в обрастании пластин на гидрокарусели, гидрофлюгере и неподвижном субстрате // Вестник ЛГУ. Серия 3. 1990. Вып. 3. № 17. С. 19–23.

488. Раилкин А.И., Фатеев А.Э. Стандартизация биологических испытаний. I. Гидрофлюгер – устройство для экспонирования пластин обрастаний под постоянным углом к направлению течения // Вестник ЛГУ. Серия 3. 1990. Вып. 3. № 17. С. 11–19.

489. Раилкин А.И., Бесядовский А.Р., Примаков И.М., Колдунов А.В. Взаимодействие прибрежных бентосных сообществ Белого моря с придонным слоем. СПб.: Изд-во С.-Петерб. ун-та, 2012. 408 с.

490. Райс Э. Аллелопатия. М.: Мир, 1978. 383 с.

491. Ратькова Т.Н. Распределение численности и биомассы фитопланктона // Экосистемы пелагиали перуанского района. М.: Наука, 1980. С. 66–81.

492. Раузер-Черноусова Д.М. О количественном распределении хлорофилла в современных и ископаемых морских осадках // Бюл. Московского общества испытателей природы. Отд. геол. 1930. Т. 8. № 3–4. С. 285–299.

493. Ревков Н.К., Неврова Е.Л. Изучение особенностей структуры таксоцена бентосных диатомовых (Bacillariophyta) с помощью методов многомерной статистики (бухта Ласпи, Черное море, Украина) // Альгология. 2004. Т. 14. № 2. С. 161–170.

494. Ривьер И.К. Особенности функционирования зоопланктонных сообществ водоемов разных типов // Структура и функционирование пресноводных экосистем. Л.: Наука, 1988. С. 80–111.

495. Ривьер И.К. Влияние стоков г. Череповца на зоопланктон Шекснинского плеса // Влияние стоков Череповецкого промышленного узла на экологическое состояние Рыбинского водохранилища. Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод, 1991. С. 42–59.

496. Ривьер И.К. Современное состояние зоопланктона Рыбинского водохранилища // Современное состояние экосистемы Рыбинского водохранилища. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. С. 205–232.

497. Ривьер И.К. Изменение биопродуктивности различных акваторий озеровидного водохранилища в периоды становления, естественного эволюционирования и усиления антропогенного воздействия // Водные ресурсы. 1998. Т. 25. № 5. С. 589–597.

498. Ривьер И.К. Зоопланктон // Современная экологическая ситуация в Рыбинском и Горьковском водохранилищах: состояние биологических сообществ и перспективы рыборазведения. Ярославль: Изд-во Ярославского гос. техн. ун-та, 2000. С. 175–194.

499. Рижинашвили А.Л. Развитие экосистемных представлений в водной экологии (Российская Империя – СССР, первая половина XX века). М.: Товарищество научных изданий КМК, 2021. 231 с.

500. Романенко В.И., Кузнецов С.И. Экология микроорганизмов пресных водоемов. Ленинград: Наука, 1974. 196 с.

501. Романенко В.И. Микробиологические процессы продукции и деструкции органического вещества во внутренних водоемах. Л.: Наука, 1985. 295 с.

502. Романенко В.Д., Оксиюк О.П., Жукинский В.Н. и др. Экологическая оценка воздействия гидротехнического строительства на водные объекты. Киев: Наук. думка, 1990. 256 с.

503. Романова А.П., Фурсенко М.В. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресноводных водоемах. Бактериопланктон и его продукция. Л.: ГосНИОРХ, 1984. 22 с.

504. Россолимо Л.Л. Загрязнение вод и антропогенное эвтрофирование водоемов // Гидробиол. журн. 1975. № 1. С. 5–11.

505. Руководство по методам гидробиологического анализа поверхностных вод и донных отложений / Под ред. В.А. Абакумова. Л.: Гидрометеоиздат, 1983. 240 с.

506. Руководство по гидробиологическому мониторингу пресноводных экосистем" / под. ред. д.б.н. Абакумова В.А. СПб.: Гидрометеоиздат, 1992. 318 с.

507. Рыбинское водохранилище и его жизнь. Л.: Наука, 1972. 364 с.

508. Рындевич С.К. Фауна и экология водных жесткокрылых Беларуси (Haliplidae, Noteridae, Dytiscidae, Gyrinidae, Helophoridae, Georissidae Hydrochidae, Spercheidae, Hydrophilidae, Hydraenidae, Limnichidae, Dryopidae, Elmidae). Монография в 2-х частях. Ч. 1. Минск: УП “Технопринт”, 2004. 272 с.

509. Рындевич С.К., Цинкевич В.А. Сбор и определение водных и околоводных жесткокрылых. Учеб. пособие. Минск: БГУ, 2004. 123 с.

510. Сажина Л.И. Науплиусы массовых видов пелагических копепод мирового океана. Определитель. Киев: Наук. думка, 1985. 240 с.

511. Сажнев А.С., Родионова Е.Ю. Жесткокрылые (Insecta: Coleoptera), собранные в световые ловушки со сверхъяркими светодиодами на территории Краснодара // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия Химия. Биология. Экология, 2019. Вып. 19. № 2. С. 188–195.

512. Самохвалов В.Л. Руслообразовательные процессы и концепция континуума населения водотока. Магадан: СВНЦ ДВО РАН, 1995. 64 с. (Труды НИЦ “Чукотка”; вып. 4.)

513. Сборник классических методов гидробиологических исследований для использования в аквакультуре / Cоставители сборника Г.К. Плотников, Т.Ю. Пескова, A. Шкуте, А. Пупиня, М. Пупиньш. Академическое издательство Даугавпилсского университета “Сауле”, 2017. 282 с.

514. Семенова А.С. Индикаторная роль зоопланктона в оценке экологического состояния Куршского залива. Дис. ... канд. биол. наук. Борок, 2010. 280 с.

515. Семенова А.С. Доля мертвых особей в зоопланктоне Куршского залива Балтийского моря // Биология внутр. вод. 2011. № 3. С. 35–44.

516. Семенова Т.А. Антропогенная изменчивость микроскопических грибов в водных экосистемах (на примере водоемов Среднего Поволжья). Тольятти: Изд-во ИЭВБ, 1994. 36 с.

517. Семенченко В.П. Принципы и системы биоиндикации текучих вод. Минск: Орех, 2004. С. 228.

518. Семенченко В.П., Разлуцкий В.И. Экологическое качество поверхностных вод. Минск: Беларус. навука, 2010. 329 с.

519. Семерной В.П. Общая гидробиология: Текст лекций. Ярославль: ЯрГУ, 2008. 184 с.

520. Сигарева Л.Е. Пигментные критерии оценки экологического состояния водоема // Биогеохимические основы экологического нормирования. М.: Наука, 1993. С. 6469.

521. Сигарева Л.Е. Спектрофотометрический метод определения пигментов фитопланктона в смешанном экстракте // Методические вопросы изучения первичной продукции планктона внутренних водоемов: Сб. матер. конф. СПб: Гидрометеоиздат, 1993. С. 7586.

522. Сигарева Л.Е. Современные методы изучения содержания растительных пигментов в водоемах // Водоросли: таксономия, экология, использование в мониторинге. Екатеринбург: УрО РАН. 2011. С. 140146.

523. Сигарева Л.Е. Хлорофилл в донных отложениях волжских водоемов. М: Тов-во науч. изд. КМК, 2012. 217 с.

524. Сигарева JI.E., Тимофеева Н.А. Растительные пигменты в илах Иваньковского водохранилища как показатели деструкционных процессов // Водные ресурсы. 2003. Т. 30. № 3. С. 346–356.

525. Сигарева Л.Е., Девяткин В.Г. Содержание фотосинтетических пигментов в перифитоне Рыбинского водохранилища // Труды ИБВВ АН СССР. Вып. 54(57). Л.: Наука, 1987. С. 3.

526. Сигарева Л.Е., Коренева Т.Г., Минеева Н.М., Тимофеева Н.А. Сравнительный анализ содержания хлорофилла а в пресноводном и морском водоемах // Биология внутр. вод. 2020. № 5. С. 439–449.

527. Сигарева Л.Е., Тимофеева Н.А. Некоторые подходы к использованию свойств литоральных отложений для изучения продуктивности микрофитобентоса // Биология внутр. вод. 2004. № 3. С. 52–59.

528. Сигарева Л.Е., Тимофеева Н.А., Законнов В.В. Растительные пигменты и органическое вещество в донных отложениях крупных мелководных озер Северо-Запада России // Геохимия. 2022. Т. 67. № 12. С. 1285–1296.

529. Сигарева Л.Е., Тимофеева Н.А., Законнов В.В. Содержание пигментов в донных отложениях небольшого руслового водохранилища // Биология внутр. вод. 2023. № 6. С. 811–820.

530. Сигарева Л.Е., Тимофеева Н.А., Зубишина А.А., Бабаназарова О.В. Оценка продуктивности микрофитобентоса оз. Плещеево по растительным пигментам // Вод. ресурсы. 2005. Т. 32. № 6. С. 739748.

531. Сигарева Л.Е., Шарапова Н.А. Фотосинтетические пигменты в донных отложениях // Экология фитопланктона Рыбинского водохранилища. Тольятти, 1999. С. 190–207.

532. Силина А.Е., Прокин А.А. Трофическая структура макрозообентоса болотных водоемов лесостепной зоны Среднерусской возвышенности // Биология внутр. вод. 2008. № 3. С. 35–44.

533. Симонян С.А., Мамиконян Т.О. К изучению микромицетов филлопланы гвоздики ремонтантной и каллы болотной // Бюл. Ботан. сада АН Армянской ССР. 1989. № 29. С. 132–142.

534. Сиренко Л.А., Козицкая В.Н. Биологически активные вещества водорослей и качество воды. Киев: Наук. думка, 1988. 254 с.

535. Скальская И.А. Стрессовые состояния сообществ зооперифитона Рыбинского водохранилища // Влияние стоков Череповецкого промышленного узла на экологическое состояние Рыбинского водохранилища. Рыбинск, 1990. С. 59–72.

536. Скальская И.А. Зооперифитон водоемов бассейна Верхней Волги. Рыбинск, 2002. 256 с.

537. Скальская И.А., Баканов А.И. Сравнение результатов мониторинга водохранилищ по зооперифитону и зообентосу // Перифитон континентальных вод: современное состояние изученности и перспективы дальнейших исследований. Мат. докладов Межд. симпозиума. Тюмень: ООО “Опцион ТМ-Холдинг”, 2003. С. 102–103.

538. Скворцова О.Н. Нормативные документы о хранении лекарственного растительного сырья // Новая аптека. 1998. № 6. С. 104–107.

539. Скворцов В.В. Количественная оценка участия мейобентоса разнотипных озер Карельского перешейка в процессах трансформации органического вещества донными сообществами: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Л., 1985. 21 с.

540. Смирнов Н.Н. Ракообразные. Chydoridae фауны мира // Фауна СССР. Л.: Наука, 1971. Т. 1. Вып. 2. 553 с.

541. Современные методы количественной оценки распределения морского планктона. М.: Наука, 1983. 279 с.

542. Соколов В.Е., Чернов Ю.И., Решетников Ю.С. Национальная программа России по сохранению биоразнообразия // Биоразнообразие: Степень таксономической изученности: Всесоюзн. совещ., Москва, 1991. М., 1994. С. 4–12.

543. Соловьева В.В., Розенберг Г.С. Современное представление об экотонах или теория экотонов // Успехи современной биологии. 2006. Т. 126. № 6. С. 531–549.

544. Сорокин Ю.И., Суханова И.Н., Коновалова Г.И., Павельева Е.Б. Первичная продукция и фитопланктон района экваториальной дивергенции в восточной части Тихого океана // Труды Института океанологии АН СССР. 1975. Т. 102. С. 108–122.

545. Столбунова В.Н. Многолетние изменения зоопланктонного комплекса в Иваньковском и Угличском водохранилищах // Биология внутр. вод. 1999. № 1–3. С. 92–100.

546. Столбунова В.Н. Зоопланктон оз. Плещеево. М.: Наука, 2006. 152 с.

547. Структура и функционирование экосистемы Рыбинского водохранилища в начале XXI века / ред. Лазарева В.И. М: РАН, 2018. 456 с.

548. Суханова И.Н., Беляева Т.В. Видовой состав, распределение и суточные изменения фитопланктона Черного моря в октябре 1978 г. // Экосистемы пелагиали Черного моря. М.: Наука, 1980. С. 65–91.

549. Сущеня Л.М. Интенсивность дыхания ракообразных. Киев: Наукова думка, 1972. 283 с.

550. Сущеня Л.М., Семенченко В.П., Вежновец В.В. Биология и продукция ледниковых реликтовых ракообразных. Минск: Наука и техника, 1986. 159 с.

551. Сытник К.М., Брайон А.В., Гордецкий А.В. Биосфера. Экология. Охрана природы. Киев: Наукова думка, 1987. 524 с.

552. Сытник К.М., Брайон А.В., Гордецкий А.В., Брайон А.П. Словарь-справочник по экологии. Киев: Наукова думка, 1994. 665 с.

553. Тальских В.Н. Мониторинг перифитона // Руководство по гидробиологическому мониторингу пресноводных экосистем. СПб.: Гидрометеоиздат, 1992. С. 32–63.

554. Телеш И.В. Трансформация озерного зоопланктона в реках // ДАН СССР. 1986. Т. 291. № 2. С. 495–498.

555. Телеш И.В. Взаимоотношения между видом-вселенцем Dreissena polymorpha и микрозоопланктоном в прибрежных водах эстуария реки Невы (Финский залив Балтийского моря) // Биологические инвазии в водных и наземных экосистемах. М.: Т-во науч. изд. КМК, 2004. С. 268–274.

556. Телеш И.В., Большагин П.В., Панов В.Е. Количественная оценка влияния вида-вселенца Cercopagis pengoi (Crustacea, Onychopoda) на структуру и функционирование планктонного сообщества в Финском заливе Балтийского моря // ДАН. 2001. Т. 377. № 3. С. 427–429.

557. Терехова В.А. Микромицеты в экологической оценке водных и наземных экосистем. М.: Наука, 2007. 215 с.

558. Терехова В.А., Семенова Т.А., Полянская Л.М. Исследование грибов методом люминисцентной микроскопии // Микробиология. 1991. Т. 60. Вып. 5. С. 890–895.

559. Терещенко В.Г., Терещенко Л.И., Сметанин М.М. Оценка различных индексов для выражения биологического разнообразия сообщества // Биоразнообразие. Степень таксономической изученности. М.: Наука, 1994. С. 86–98.

560. Тимофеева Н.А., Сигарева Л.Е., Законнов В.В. Растительные пигменты в донных отложениях как показатели трофического состояния малой реки // Вода: химия и экология. 2015. № 7. С. 18–24.

561. Тимофеева Н.А., Сигарева Л.Е., Законнов В.В. Вариабельность трофии донных биотопов Горьковского водохранилища по осадочным пигментам // Водные ресурсы. 2021. № 1. С. 70–79.

562. Тимофеева Н.А., Сигарева Л.Е., Законнов В.В. Осадочные пигменты как показатели продуктивности мелководного Костромского расширения Горьковского водохранилища // Водные ресурсы. 2022а. Т. 49. № 3. С. 333–340.

563. Тимофеева Н.А., Сигарева Л.Е., Законнов В.В. Многолетние тренды содержания осадочных пигментов в Горьковском водохранилище // Биология внутр. вод. 2022б. № 4. С. 441–444.

564. Тимохина А.Ф. Структура сообщества зоопланктона и его энергетический баланс в Куйбышевском и Саратовском водохранилищах // Тр. Ин-та биологии внутр. вод АН СССР. 1983а. Вып. 48(51). С. 85–93.

565. Тимохина А.Ф.Питание коловраток рода Asplanchna (Ploimida, Asplanchnidae) // Трофические связи и их роль в продуктивности природных водоемов. Л.: Зоол. ин-т. АН СССР, 1983б. С. 81–83.

566. Тимохина А.Ф. Зоопланктон как компонент экосистемы Куйбышевского водохранилища. Тольятти: Ин-т экологии волж. бассейна, 2000. 193 с.

567. Тиунова Т.М. Методы сбора и первичной обработки количественных проб // Методические рекомендации по сбору и определению зообентоса при гидробиологических исследованиях водотоков Дальнего Востока России: Методическое пособие. М.: Изд-во ВНИРО, 2003. С. 5–13.

568. Тиунова Т.М., Тесленко В.А., Макарченко М.А., Сиротский С.Е. Структура сообществ донных беспозвоночных в экосистемах рек бассейна реки Тимптон (Южная Якутия) // Жизнь пресных вод. Владивосток: Биолого-почвенный институт ДВО РАН, 2013. С. 187–198.

569. Тихомирова А.Л. Учет напочвенных беспозвоночных // Методы почвенно-зоологических исследований. М.: Наука. 1975. С. 73–85.

570. Ткачев А.В. Исследование летучих веществ растений. Новосибирск: Издательско-полиграфическое предприятие “Офсет”, 2008. 969 с.

571. Токин Б.П. Бактерициды растительного происхождения (фитонциды) / С участием Коваленок А., Неболюбовой Г., Торопцева И., Ферри Л., Филатовой А.М. Медгиз, 1942. 108 с.

572. Токин Б.П. Целебные яды растений. Повесть о фитонцидах. Изд. 3-е, испр. и доп. Ленинград: Изд-во Ленингр. университета, 1980. 280 с.

573. Торговый дом ПромТекстиль. Электронный ресурс. URL: https://promtextil.ru (обращение 20 июня 2023 г.)

574. Травянко В.С., Евдокимова Л.В. Бентометр МБ-ТЕ // Гидробиол. журн. 1968. Т. 4. № 1. С. 94–96.

575. Трифонова И.С., Макарцева Е.С. Сезонная и многолетняя динамика фито- и зоопланктона, и их взаимоотношения в мезотрофном озере // Биология внутр. вод. 2006. № 3. С. 18–25.

576. Труба Н.А., Набиванец Б.И., Нахшина Е.П. Грунтоотборник ГТ-1 // Гидробиол. журн. 1974. Т. 10. № 2. С. 126–128.

577. Усачев П.И. Количественная методика сбора и обработки фитопланктона // Труды Всесоюзного гидробиологического общества. 1961. Т. 11. С. 411–415.

578. Усенко О.М., Сакевич A.И., Паламарчук В.Д. Влияние фенольных кислот гидрофитов на развитие планктонных водорослей // Альгология. 2003. Т. 13. № 1. С. 26–33.

579. Фасулати К.К. Полевое изучение наземных беспозвоночных. М.: Высш. шк., 1971. 424 с.

580. Фатовенко М.А. О вертикальном распределении микрозообентоса в донных отложениях Днепродзержинского водохранилища // Биологические основы рыбного хозяйства республик Средней Азии и Казахстана. 1967. С. 280–281.

581. Федоров В.Д. О методах изучения фитопланктона и его активности. М.: изд-во МГУ, 1979. 168 с.

582. Федоров В.Д., Королева А.Н., Левич А.П. Количественные закономерности в соотношении численности видов зоопланктона Белого моря // Науч. докл. высшей школы. Биол. науки. 1980. № 5. С. 101–106.

583. Филиппов Д.А., Прокин А.А., Пржиборо А.А. Методы и методики гидробиологического исследования болот: учебное пособие. Тюмень: Изд-во Тюменского гос. ун-та, 2017. 208 с.

584. Фрайштат Д.М. Реактивы и препараты для микроскопии. Справочник. М.: Химия, 1980. 480 с.

585. Френкель С.Э. Дрифт беспозвоночных как кормовая база молоди лососей в типичной малой реке Сахалина: автореф. дис. ... канд. биол. наук. М.: ВНИРО, 2011. 26 с.

586. Хахинов В.В., Намсараев Б.Б., Горленко В.М. и др. Полевой практикум по водной гидрохимии и микробиологии: Учебно-метод. пособие. Улан-Удэ: Издательство Бурятского госуниверситета, 2016. Изд. 2, переработанное. 80 с.

587. Хлебович Т.В. Скорость потребления кислорода у коловраток // Основы изучения пресноводных экосистем. Л., 1981. С. 98–102.

588. Цалолихин С.Я. Определение веса пресноводных нематод // Эволюция, систематика, морфология и экология свободноживущих нематод. Л.: ЗИН АН СССР, 1981. С. 80–85.

589. Царенко В.М. Внеклеточные органические кислоты и их связь с функциональной активностью синезеленых водорослей: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Киев, 1983. 25 с.

590. Цееб Я.В., Чугунов Ю.А. Исследования по антропогенному эвтрофированию пресных водоемов в СССР // Круговорот веществ и биологическое самоочищение водоемов. Киев: Наукова думка, 1980. С. 39–53.

591. Цимдинь П.А. Сообщества зоопланктона бассейна р. Салаца // Биценотическая структура малых рек Латвии. Бассейн реки Салаца. Рига: Зинанте, 1989. С. 97–107.

592. Цимдинь П.А., Лиепа Р.А., Уртанс А.В. Типологическая классификация малых рек // Известия АН Латв.ССР. 1985. № 3. С. 104–112.

593. Цимдинь П.А., Родионов В.И. Принципы и методы анализа речных биоценозов в системе фонового регионального мониторинга пресноводных экосистем // Биоценотическая структура малых рек Латвии. Рига: Зинатне, 1989. С. 3–15.

594. Цихон-Луканина Е.А. Трофология водных моллюсков. М.: Наука, 1987. 174 с.

595. Цуриков М.Н., Цуриков С.Н. Природосберегающие методы исследования беспозвоночных животных в заповедниках России // Труды Ассоциации особо охраняемых природных территорий Центрального Черноземья России. 2001. Вып. 4. 130 с.

596. Чебанова В.В. Динамика дрифта беспозвоночных в лососевых реках разного типа (юго-восток Камчатки) // Гидробиол. журн. 1992. Т. 28. № 4. С. 31–39.

597. Чебанова В.В. Кормовая база молоди лососей в бассейнах рек Большая и Паратунка (Камчатка) // Тр. ВНИРО. 2002. Т. 141. С. 229–239.

598. Чебанова В.В. Бентос лососевых рек Камчатки. М.: Изд-во ВНИРО, 2009. 172 с.

599. Чебанова В.В., Улатов А.В., Леман В.Н. Сравнительная характеристика бентоса, дрифта и обилия молоди лососевых в водотоках различного типа, относящихся к бассейну р. Кихчик (Западная Камчатка) // Исследование водных биологических ресурсов Камчатки и северно-западной части Тихого океана: сб. науч. тр. КамчатНИРО. Вып. 7. Петропавловск-Камчатский, 2004. С. 122–130.

600. Чеботарев А.И. Гидрологический словарь. Л.: Гидрометиздат, 1978. 308 с.

601. Чекановская О.В. Водные малощетинковые черви фауны СССР. М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1962. 411 с.

602. Чернов Ю.И. Биологическое разнообразие: сущность и проблемы // Успехи современной биологии. 1991. Т. 111. № 4. С. 499–507.

603. Чертопруд М.В. Структурная изменчивость литореофильных сообществ макробентоса // Журнал общей биологии. 2007. Т. 68. № 6. С. 424–434.

604. Чертопруд М.В. Разнообразие и классификация реофильных сообществ макробентоса средней полосы Европейской России // Журн. общ. биологии. 2011. Т. 72. № 1. С. 51–73.

605. Чертопруд М.В., Чертопруд Е.С. Краткий определитель беспозвоночных пресных вод центра Европейской России. М.: Т-во научных изданий КМК, 2011. 219 с.

606. Чиркова З.Н. Микробентос // Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. С. 178–185.

607. Численко Л.Л. Номограммы для определения веса водных организмов по размерам и форме тела (морской мезобентос и планктон). Л.: Наука, 1968. 106 с.

608. Чуйков Ю.С. Экологический анализ состава и структуры сообществ водных животных как метод биологической оценки качества вод // Экология. 1978. № 5. С. 53–57.

609. Чуйков Ю.С. Методы экологического анализа состава и структуры сообществ водных животных. Экологическая классификация беспозвоночных, встречающихся в планктоне пресных вод // Экология. 1981. № 3. С. 71–77.

610. Чуйков Ю.С. Зоопланктон Северного Прикаспия и Северного Каспия в условиях изменения уровня моря и антропогенных воздействий. Дисс. докт. биол. наук в форме научн. докл. СПб., 1995. 73 с.

611. Шакурова Н.В. Большой практикум по зоологии беспозвоночных (Protozoa, Spongia, Coelenterata, Plathelminthes, Nematoda): Учебно-методическое пособие. Казань: Казанский (Приволжский) федеральный университет, 2011. 38 с. Электронный ресурс: https://kpfu.ru/portal/docs/F2003982326/ShAKUROVA_BOLShOJ.PRAKTIKUM.po.zbp_metodichka.pdf

612. Шарапова Т.А. Пространственное распределение зооперифитона в эвтрофном озере // Вестник экологии, лесоведения и ландшафтологии. 2005. № 6. С. 146–149.

613. Шарапова Т.А. Зооперифитон внутренних водоемов Западной Сибири. Новосибирск: Наука, 2007. 167 с.

614. Шарапова Т.А., Бабушкин Е.С. Сравнение зообентоса и зооперифитона крупной и средней реки // Сибирский экологический журнал. 2013. № 6. С. 841–845.

615. Шарапова Т.А., Бабушкин Е.С. Пространственная неоднородность зообентоса и зооперифитона в озерах-старицах (Западная Сибирь) // Биология внутр. вод. 2019. № 4. С. 68–74.

616. Шарапова Т.А., Герасимова А.А., Гонтарь В.И., Бабушкин Е.С., Глазунов В.А., Николаенко С.А., Герасимов А.Г. Таксономический и ценотический состав зооперифитона озер лесотундры (Западная Сибирь) // Биология внутр. вод. 2021. № 6. С. 586–596. DOI:https://doi.org/10.31857/S032096522105020X

617. Шереметевский А.М. Роль мейобентоса в биоценозах шельфа южного Сахалина, восточной Камчатки и Новосибирского мелководья. Л.: Наука, 1987. 135 с.

618. Шитиков В.К., Зинченко Т.Д. Многомерный статистический анализ экологических сообществ (обзор) // Теоретическая и прикладная экология. 2019. № 1. С. 5–11.

619. Шитиков В.К., Зинченко Т.Д., Головатюк Л.В. Метод оценки качества поверхностных вод по макрозообентосу на основе видовых индикаторных валентностей // Мат. II-й Междунар. конф. “Озерные экосистемы: биологические процессы, антропогенная трансформация, качество воды”. Минск–Нарочь. 2003. С. 537–540.

620. Шитиков В.К., Зинченко Т.Д., Розенберг Г.С. Макроэкология речных сообществ: концепции, методы, модели. Тольятти: Кассандра, 2012. 257 с.

621. Шитиков В.К., Розенберг Г.С., Зинченко Т.Д. Количественная гидроэкология: методы системной идентификации. Тольятти: ИЭВБ РАН, 2003. 463 с.

622. Шитиков В.К., Розенберг Г.С., Зинченко Т.Д. Количественная гидроэкология: методы, критерии, решения. М.: Наука, 2005. Кн. 1. 281 с.; Кн. 2. 337 с.

623. Шмидт В.М. Статистические методы в сравнительной флористике. Л.: ЛГУ, 1980. 176 с.

624. Шмидт В.М. Математические методы в ботанике: учебное пособие. Л.: Изд-во Ленинградского университета, 1984. 288 с.

625. Шубина В.Н. Дрифт донных беспозвоночных в уральской семужьенерестовой р. Щугор (бассейн Печоры) // Тр. Коми фил. АН СССР. 1979. № 40. С. 134–199.

626. Шубина В.Н. Гидробиология лососевой реки Северного Урала. Л.: Наука, 1986. 158 с.

627. Шубина В.Н. Бентос лососевых рек Урала и Тимана. СПб.: Наука, 2006. 401 с.

628. Шубина В.Н., Орлов А.В. Сравнение фильтрующей способности и уловистости ловушек при сборе проб дрифта донных беспозвоночных // Экология. 1991. № 4. С. 89–91.

629. Шуйский В.Ф., Максимова Т.В., Петров Д.С. Изоболический метод оценки и нормирования многофакторных антропогенных воздействий на пресноводные экосистемы по состоянию макрозообентоса. СПб.: Изд-во МАНЭБ, 2004. 304 с.

630. Шурганова Г.В., Жихарев В.С., Кудрин И.А., Гаврилко Д.Е., Золотарева Т.В. Отбор и обработка зоопланктона при гидроэкологических исследованиях: учебно-методическое пособие. Н-Новгород: ННГУ, 2021. 27 с.

631. Шустов Ю.А. Дрифт донных беспозвоночных в лососевых реках бассейна Онежского озера // Гидробиол. журн. 1977. Т. 13. Вып. 3. С. 32–37.

632. Шустов Ю.А. Дрифт беспозвоночных в притоках Онежского озера // Лососевые нерестовые реки Онежского озера. Л.: Наука, 1978. С. 50–53.

633. Шустов Ю.А. Экология молоди атлантического лосося. Петрозаводск: “Карелия”, 1983. 152 с.

634. Шустов Ю.А., Широков В.А. Методика изучения дрифта беспозвоночных в реке // Гидробиол. журн. 1980. Т. 16. № 3. С. 100–102.

635. Щербина Г.Х. Годовая динамика макрозообентоса открытого мелководья Волжского плеса Рыбинского водохранилища // Зооценозы водоемов бассейна Верхней Волги в условиях антропогенного воздействия. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. С. 108–144.

636. Щербина Г.Х. Таксономический состав и сапробиологическая значимость донных макробеспозвоночных различных пресноводных экосистем Северо-Запада России // Экология и морфология беспозвоночных континентальных водоемов вод: сб. науч. работ, посвященный 100-летию со дня рождения Ф.Д. Мордухай-Болтовского. Махачкала, 2010. С. 426–466.

637. Щука Т.А. Характеристика современного состояния зоопланктона Балтийского моря: Автореф. дис. … канд. биол. наук. М., 2002. 28 с.

638. Экологические факторы пространственного распределения и перемещения гидробионтов. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. 335 с.

639. Эргашбоев И. Новый микробентометр // Гидробиол. журн. 1978. Т. 14. № 5. C. 112–113.

640. Явид Е.Я., Ходонович В.В., Крылова Ю.В., Курашов Е.А., Смагин Р.Е. Сравнительная характеристика низкомолекулярного метаболома макрофитов разнотипных водоемов акватории Кандалакшского залива Белого моря // Химия растительного сырья. 2024. № 1. C. 211–224. DOI:https://doi.org/10.14258/jcprm.20240113005

641. Яковлев В.А. Оценка качества поверхностных вод Кольского Севера по гидробиологическим показателям и данным биотестирования (практические рекомендации). Кольский филиал АН СССР. Апатиты, 1988. 27 с.

642. Яковлев В.А. Трофическая структура зообентоса – показатель состояния водных экосистем и качества воды // Водные ресурсы. 2000. Т. 27. № 2. С. 237–244.

643. Яковлев В.А. Пресноводный зообентос Северной Фенноскандии (разнообразие, структура и антропогенная динамика). Апатиты: КарНЦ РАН, 2005. Ч. 1. 161 с.; Ч. 2. 145 с.

644. A Copmrehensive Guide to Wildco Water Bottle Samplers. Wildlife Supply Company, USA. 2010. 45 p.

645. A Manual on Methods for Measuring Primary Productivity in Aquatic Environments. IBP Handbook 12 / Vollenweider R.A. (ed.). Oxford: Blackwell, 1974. 225 p.

646. Abdel-Wareth M.T.A., Sayed S.S.M. Association pattern between freshwater snails and fungi in relation to water quality parameters in two Egyptian governorates // Egytian Journal of Aquatic Biology and Fisheries. 2023. V. 27(1). P. 179–201.

647. Abrusán G., Fink P., Lampert W. Biochemical limitation of resting egg production in Daphnia // Limnology and oceanography. 2007. V. 52. No 4. P. 1724–1728.

648. Adams J. The feeding behavior of Bdellocephala punctata, a freshwater triclad // Oikos. 1980. V. 35. No 1. P. 2–7.

649. Akbar S., Gu L., Sun Y., Zhang L., Lyu K., Huang Y., Yang Z. Understanding host-microbiome-environment interactions: Insights from Daphnia as a model organism // Science of the Total Environment. 2022. V. 808. P. 152093.

650. Al-Dossary M.A., Abood S.A., Hamid T. AL-Saad. Biodegradation of Crude Oil Using Aspergillus species // Journal of Biology Agriculture and Healthcare. 2019. V. 9. No 4. P. 60–64. DOI:https://doi.org/10.7176/JBAH/9-4-09

651. Al-Nasrawi H. Biodegradation of Crude Oil by Fungi Isolated from Gulf of Mexico // Journal of Bioremediation & Biodegradation. 2012. V. 3. Is. 4. P. 147. DOI:https://doi.org/10.4172/2155-6199.1000147

652. Alekseev V., Lampert W. Maternal control of resting-egg production in Daphnia // Nature. 2001. V. 414. No 6866. P. 899–901.

653. Alexander M. Microbial ecology. New York: Acad. Press, 1971. 480 p.

654. Ali A. A Simple and Efficient Sediment Corer for Shallow Lakes1 // Journal of Environment Quality. 1984. V. 13(1). P. 63. DOI:https://doi.org/10.2134/jeq1984.00472425001300010011x

655. Algal culturing techniques / Andersen R.A. (ed.). Elsevier, 2005. 592p.

656. Algal ecology. Freshwater benthic ecosystems / Ed. by Stevensen R.J., Bothwell M.L., Lowe R.L. 1996. 735 p.

657. Allan J.D. Stream Ecology: Structure and Function of Running Waters. London: Chapman & Hall, 1995. 388 p.

658. Allelopathy. A Physiological Process with Ecological Implications / Eds: Reigosa, Manuel J.; Pedrol, Nuria; González, Luís. Springer, Dordrecht, The Netherlands, 2006. 637 p.

659. Allelopathy. Current Trends and Future Applications / Eds: Cheema Z., Farooq M., Wahid A. Springer, Berlin, Heidelberg, 2013. 528 p.

660. Andrews J.H., Kinkel L.L., Berbee F.M., Nordheim E.V. Fungi, leaves and the theory of island biogeoraphy // Microb. Ecol. 1987. V. 14. No 3. P. 277–290.

661. Anisimova O.V. European flora of the desmid genus Euastrum. М.: KMK Scientific Press, 2021. 109 p.

662. Anonymous. Live trapping in Denmark // Latissimus. 2005. No 20. P. 31.

663. Aloi J.E. A critical review of recent freshwater periphyton field methods // Can. J. Fish. and Aquat. Sci. 1990. V. 47. No 3. P. 656–670.

664. Antioxidants in Plant-Microbe Interaction / Eds: Singh H.B., Vaishnav A., Sayyed R.Z. Springer Singapore, 2021. 655 p. DOI:https://doi.org/10.1007/978-981-16-1350-0

665. Alonso R., Catherine M.P. Invertebrate drift and benthic community dynamics in a lowland neotropical stream, Costa Rica // Hydrobiologia. 1998. V. 386. P. 19–26.

666. Anderson N.H., Cummins K.W. The influence of diet on the life histories of aquatic insects // Journal of the Fisheries Research Board of Canada. 1979. V. 36. P. 335–342.

667. Ankar S., Elmgren R. The benthic macro- and meiofauna of the AskoLandsort area. A stratified random sampling survey // Contribution from the Asko Laboratory, Univ. of Stockholm. Sweden. 1976. No 11. 115 p.

668. Antal T.K., Venediktov P.S., Matorin D.N., et al. Measurement of phytoplankton photosynthesis rate using a pump-and-probe fluorometer // Oceanologia. 2001. V. 43. No 3. P. 291–313.

669. Aquatic sampling instruments & equipment – from the bottom up. Wildlife Supply Company, 1993. 112 pp.

670. Arnekleiv J.V., Storest L. Downstream effects of mine drainage on benthos and fish in a Norwegian river: a comparison of the situation before and after river rehabilitation // Journal of Geochemical Exploration. 1995. V. 52. P. 35–43.

671. Asif A., Baig M.A., Siddiqui M.B. Role of Jasmonates and Salicylates in Plant Allelopathy // Jasmonates and Salicylates Signaling in Plants. Signaling and Communication in Plants. Springer, Cham., 2021. P. 115–127. DOI:https://doi.org/10.1007/978-3-030-75805-9_6

672. Aslam F., Khaliq A., Matloob A., Tanveer A., Hussain S., Zahir Z.A. Allelopathy in agro-ecosystems: a critical review of wheat allelopathy-concepts and implications // Chemoecology. 2017. V. 27. P. 1–24. DOI:https://doi.org/10.1007/s00049-016-0225-x

673. Astakhov M.V., Bogatov V.V. Vertical redistribution of drifting benthic invertebrates in the Kedrovaya River, Primorsky Region of Russia // Open Journal of Ecology. 2014. V. 4. No 2. Р. 53–59. DOI:https://doi.org/10.4236/oje.2014.42007

674. Azim M.E., Verdegem M.C.J., van Dam A.A., Beveridge M.C.M. Periphyton: Ecology, Exploitation and Management. 2005. 352 p.

675. Bahls L.L. Periphyton bioassessment methods for Montana streams. Water Quality Bureau, Department of Health and Environmental Sciences, Helena, Montana, 1993. 132 p.

676. Baker A.L., Baker K.K., Tyler P.A. A family of pneumatically-operated thin layer samplers for replicate sampling of heterogeneous water columns // Hydrobiologia. 1985. V. 122. P. 207–211.

677. Bamber R.N. Sodium hexametaphosphate as an aid in benthic sample sorting // Mar. Environ. Res. 1982. V. 7. No 4. P. 251–255.

678. Båmstedt U. Chemical composition and energy content // The Biological Chemistry of Marine Copepods / Corner E.D.S., O’Hara S.C. (eds.). Oxford: Oxford Scientific Publications, 1986. P. 1–58.

679. Barbour M.T., Gerritsen J., Snyder B.D., Stribling J.B. Rapid Bioassessment Protocols for Use in Streams and Wadeable Rivers: Periphyton, Benthic Macroinvertebrates and Fish, Second Edition. U.S. Environmental Protection Agency; Office of Water; Washington, D.C., 1999. 337 p.

680. Barnett A., Beisner B.E. Zooplankton biodiversity and lake trophic state: explanations invoking resource abundance and distribution // Ecology. 2007. V. 88(7). P. 1675–1686.

681. Baryshev I.A. Veselov A.E. Seasonal Dynamics of. Benthos and Drift Invertebrates in Some Tributaries of Lake Onega // Inland Water Biology. 2007. No 1. Р. 74–80.

682. Bärlocher F. Aquatic hyphomycetes inchanging environment // Fungal Ecology. 2016. V. 19. P. 14–27.

683. Batko A. Zaris hydromikologii. Warszawa: PWN, 1975. 478 s.

684. Behrenfeld M.J., Siegel D.A., O’Malley R.T. Global ocean phytoplankton and productivity / J.M. Levy, Ed. State of the climate in 2007. Bulletin of the American Meteorological Society, July 2008. P. S56–S61.

685. Bell R.T. Estimating production of heterotrophic bacterioplankton via incorporation of tritiated thymidine // Handbook of methods in aquatic microbial ecology / Eds Kemp P.F. et al. Boca Raton: Lewis Publ., 1993. P. 495–503.

686. Bellinger E.G., Sigee D.C. Freshwater algae: identification, enumeration and use as bioindicators. Second Edition. John Wiley & Sons, Ltd. 2015. 275 p.

687. Benoît O.L. Demars J.L., Kemp N.F., Philippe U.P., David M.H. Linking biotopes to invertebrates in rivers: Biological traits, taxonomic composition and diversity // Ecological Indicators. V. 23. 2012. P. 301–311. DOI:https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2012.04.011

688. Berezina N. Food spectra and consumption rates of four amphipod species from the North-West of Russia // Fundamental and Applied Limnology. 2007. V. 168. No 4. P. 317–326.

689. Bernatowicz P., Radzikowski J., Paterczyk B., Bebas P., Slusarczyk M. Internal structure of Daphnia ephippium as an adaptation to dispersion // Zoologischer Anzeiger. 2018. V. 277. P. 12–22.

690. Berthet P. L'activite des Oribatides (Acari, Oribatei) d'une Chenaie // Mem. Inst. Roy. Sci. Natur. 1964. V. 1. P. 1–152.

691. Bertin C., Yang X., Weston L.A. The role of root exudates and allelochemicals in the rhizosphere // Plant and Soil, 2003. V. 256(1). P. 67–83. DOI:https://doi.org/10.1023/a:1026290508166

692. Beutler M. Spectral fluorescence of chlorophyll and phycobilins as an in-situ tool of phytoplankton analysis – models, algorithms and instruments // Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades der Mathematisch-Naturwissenschaftlichen Fakultät der Christian-Albrechts-Universität zur Kiel. 2003. 174 pp.

693. Beutler M., Wiltshire K.H., Meyer B. et al. A fluorometric method for the differentiation of algal populations in vivo and in situ // Photosynthes. Res. 2002. V. 72. P. 39–53.

694. Bickel S.L., Tang K.W., Grossart H.P. Use of aniline blue to distinguish live and dead crustacean zooplankton composition in freshwaters // Freshwater Biology. 2008. V. 54. No 5. P. 971–981.

695. Biddanda B., Ogdahl M., Cottner J.B. Dominance of bacterial metabolism in oligotrophic rela-tive to euphotic waters // Limnol. Oceanogr. 2001. V. 46. P. 730–739.

696. Biggs B.J.F., Kilroy C. Stream Periphyton Monitoring Manual. New Zealand Ministry for the Environment. Christchurch, New Zealand, 2000. 247 p.

697. Biological Monitoring of Rivers: Applications and Perspectives / Ed. by Ziglio G., Flaim G., Wiley M.S. John Wiley & Sons, Ltd. 2006. 469 p.

698. Bishop J.E., Hynes H.B.N. Downstream drift of the invertebrate fauna in a stream ecosystem // Arch. f. Hydrobiol. 1969. V. 66. No 1. P. 56–90.

699. Blomqvist S., Abrahamsson B. An improved Kajak-type gravity core sampler for soft bottom sediments // Swiss Journal of Hydrology. 1985. V. 47(1). P. 81–84. DOI:https://doi.org/10.1007/bf02538187

700. Bokulich N.A., Kaehler B.D., J.R. Rideout et al. Optimizing taxonomic classification of marker-gene amplicon sequences with QIIME 2’s q2-feature-classifier plugin // Microbiome. 2018. V. 6. 90. DOI:https://doi.org/10.1186/s40168-018-0470-z

701. Bolyen E., Rideout J.R., Dillon M.R. et al. Reproducible, interactive, scalable and extensible microbiome data science using QIIME 2 // Nature Biotechnology. 2019. V. 37. P. 852–857. DOI:https://doi.org/10.1038/s41587-019-0209-9

702. Borsheim K.Y., Bratbak G. Cell volume to carbon conversion factors for a bacterivorous Monas sp. enriched from seawater // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1987. V. 36. P. 171–175.

703. Bossdorf O., Richards C.L., Pigliucci M. Epigenetics for ecologists // Ecology letters. 2008. V. 11. No 2. P. 106–115.

704. Boyer L., Jabbour-Zahab R., Joncour P., Glémin S., Haag C.R., Lenormand T. Asexual male production by ZW recombination in Artemia parthenogenetica // Evolution. 2023. V. 77. No 1. P. 1–12.

705. Bower S.M., Carnegie R.B., Goh B. et al. Preferential PCR amplification of parasitic protistan small subunit rDNA from metazoan tissues // J. Eukaryot. Microbiol. 2004. V. 51. P. 325–332. DOI:https://doi.org/10.1111/j.1550-7408.2004.tb00574.x

706. Børsheim K.Y., Bratbak G. Cell volume to carbon conversion factors for a bacterivorous Monas sp. enriched from seawater // Mar. Ecol. Progr. Ser. 1987. V. 36. Р. 171–175.

707. Brauer F. Beitrage zur Kenntniss der Phyllopoden // Sitzungsberichte der Kaiserlichen Akademie der Wissenschaften. 1872. V. 65. P. 279–291.

708. Brendonck L.U.C., Riddoch B.J. Wind-borne short-range egg dispersal in anostracans (Crustacea: Branchiopoda) // Biological journal of the Linnean Society. 1999. V. 67. No 1. P. 87–95.

709. Bridcut E.E. A study of terrestrial and aerial macroinvertebrates on river banks and their contribution to drifting fauna and salmonid diets in a Scottish catchment // Hydrobiologia. 2000. V. 427. P. 83–100.

710. Brinkhurst R.O., Chua K.E., Batoosingh E. Modifications in sampling procedures as applied to studies on the bacteria and tubificid oligochaetes inhabiting aquatic sediments // J. Fish. Res. Bd. Can. 1969. V. 26. P. 2581–2593. DOI:https://doi.org/10.1139/f69-252

711. Brittain J.E., Eikeland T.J. Invertebrate drift. A review // Hydrobiol. 1988. V. 166. P. 77–93.

712. Brown B.L., Creed R.P., Skelton J., Rollins M.A., Farrell K.J. The fine line between mutualism and parasitism: complex effects in a cleaning symbiosis demonstrated by multiple field experiments // Oecologia. 2012. V. 170. P. 199–207.

713. Brussaard C.P.D. Optimization of procedures for counting viruses by flow cytometry // Appl. Environ. Microbiol. 2004. V. 70. No 3. P. 1506–1513.

714. Bubnova E.N., Grum-Grzhimailo O.A., Kozlovsky V.V. Composition and Structure of the Community of Mycelial Fungi in the Bottom Sediments of the White Sea // Moscow University Biological Sciences Bulletin. 2020. V. 75. No 3. P. 153–158. DOI:https://doi.org/10.3103/S0096392520030037

715. Burkholder P.R., Burkholder L.M., Rivero J.A. Chlorophyll a in some corals and marine plants // Nature. 1959. V. 183. No 4671. P. 1338–1339.

716. Cadwallader Ph.L. Feeding habits of two fish species in relation to invertebrate drift in a New Zeeland river // J. Marine and Freshwater Research. 1974. V. 9. No 1. P. 11–26.

717. Calabon M.S, Hyde K.D., Jones E.B.G., Chandrasiri S., Dong W, Fryar S.C., Yang J., Luo Z.L., Lu Y.Z., Bao D.F., Boonmee S. – www.freshwaterfungi.org, an online platform for the taxonomic classification of freshwater fungi // Asian Journal of Mycology. 2020. V. 3(1). P. 419–445. DOI:https://doi.org/10.5943/ajom/3/1/14

718. Callahan B.J., McMurdie P.J., Rosen M.J. et al. () DADA2: high-resolution sample inference from Illumina amplicon data // Nature Methods. 2016. V. 13. P. 581–583. DOI:https://doi.org/10.1038/nmeth.3869

719. Callens M., Macke E., Muylaert K. et al. Food availability affects the strength of mutualistic host–microbiota interactions in Daphnia magna // The ISME journal. 2016. V. 10. No 4. P. 911–920.

720. Callens M., Watanabe H., Kato Y., Miura J., Decaestecker E. Microbiota inoculum composition affects holobiont assembly and host growth in Daphnia // Microbiome. 2018. V. 6. P. 1–12.

721. Callieri C., Stockner J.G. Freshwater autotrophic picoplankton: a review // J. Limnol. 2002. V. 61. No 1. P. 1–14.

722. Caron D.A. Technique for enumeration of heterotrophic and phototrophic nanoplankton, using epifluorescence microscopy, and comparison with other procedures // Appl. Environ. Microbiol. 1983. V. 46. No 2. P. 491–498.

723. Caron D.A., Peele E.R., Lim E.L., Dennett M.R. Picoplankton and nanoplankton and their trophic coupling in surface waters of the Sargasso Sea of Bermuda // Limnol. Oceanogr. 1999. V. 44. No 2. P. 259–272.

724. Castri F. Vous aves dit “Biodiversite”? // Energies. 1992. V. 13. P. 38–39.

725. Chandler P. A Dipterists Handbook Second Edition // Amateur Entomologists' Society. 2010. V. 15. 568 p.

726. Chandler G.T., Shirley T.C., Fleeger J.W. The tom-tom corer: a new design of the Kajak corer for use in meiofauna sampling // Hydrobiologia. 1988. V. 169. No 2. P. 129–134.

727. Chen F., Lu J., Binder B.J. et al. Application of digital image analysis and flow cytometry to enumerate marine viruses stained with SYBR Gold // Appl. Environ. Microbiol. 2001. V. 67. No 2. P. 539–545.

728. Chemical Ecology of Plants: Allelopathy in Aquatic and Terrestrial Ecosystems / Mallik A.U., Inderjit (eds.). Springer, Basel, 2002. 272 p. DOI:https://doi.org/10.1007/978-3-0348-8109-8

729. Chironomidae of the Holarctic region. Keys and diagnoses. Part 1. Larvae. Ent. Scand. Suppl. No 19. Őstergőtland, Мotala. 1986. 457 p.

730. Clarke K.R., Gorley R. N., Somerfield P.J., Warwickb R.M. Change In Marine Communities: An Approach to Statistical Analysis and Interpretation (3rd edition). PRIMER-E Ltd: Plymouth, 2014. 262 p.

731. Clevenger J.F. Apparatus for the determination of volatile oil // J. Am. Pharm. Assoc. 1928. V. 17. P. 345–349.

732. Colbourne J.K., Pfrender M.E., Gilbert D., Thomas W.K., Tucker A. et al. The ecoresponsive genome of Daphnia pulex // Science. 2011. V. 331. No 6017. P. 555–561.

733. Cole G.A Textbook of Limnology. 3 Edition. The C.V. Mosby Company 1983. 401 p.

734. Copilaș-Ciocianu D., Boros B.-V., Šidagytė-Copilas E. Morphology mirrors trophic niche in a freshwater amphipod community // Freshwater Biology. 2021. 00, 1–12. DOI:https://doi.org/10.1111/fwb.13804

735. Courtney W.D., Polley D., Miller V.L. TAF, an improved fixative in nematode technique // Plant Disease Reporter. 1955. V. 39. P. 570–571.

736. Craib J.S. A sampler for taking short undisturbed marine cores // J. Cons. Perm. Int. Explo. Mer. 1965. V. 30. P. 34–39.

737. Crippen R.W., Perrier J.L. The use of Neutral Red and Evans Blue for Live / Dead determination of marine plankton // Stаin Tech. 1974. V. 49. No 2. P. 97–104.

738. Crossland N.O., Heimbach F., Hill I.R., Boudou A., Leeuwangh P., Matthiessen P., Persoone G. Summary and recommendations of the European Workshop on Freshwater Field Tests (EWOFFT). Potsdam (Germany). 1992. 37 p.

739. Cudowski F., Pietryczuk A. Biodiversity of mycoplankton in the profile of eutrophic lakes with varying water quality // Fungal Ecology. 2020. V. 48. DOI:https://doi.org/10.1016/j.funeco.2020.100978

740. Cullen J.J. Primary production methods // Encyclopedia of Ocean Sciences. Halifax: Academic Press, 2001. P. 2277–2284. DOI:https://doi.org/10.1006/rwos.2001.0203

741. Cummins K.W. Factors limiting the microdistribution of larvae of the caddisflies Pycnopsyche lepida (Hagen) and Pycnopsyche gutifer (Walker) in a Michigan stream // Ecol. Monogr. 1964. V. 34. P. 271–295.

742. Cummins K.W. Trophic relations of aquatic insects // Annual Review of Entomology. 1973. V. 18. P. 183–206.

743. Cummins K.W., Klug M.J. Feeding ecology of stream invertebrates // Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics. 1979. V. 10. P. 147–172.

744. Cummins K.W., Merritt R.W., Andrade P.C. The use of invertebrate functional groups to characterize ecosystem attributes in selected streams and rivers in south Brazil // Studies on Neotropical Fauna and Environment. 2005. V. 40. Is. 1. P. 69–89.

745. Cushing C.E. An apparatus for sampling drifting organisms in streams // J. Wildl. Mgmt. 1964. V. 28. P. 592–594.

746. Czekanowski J. Coefficient of racial likeness and durchschnittliche Differenz // Anthropol. Anz. 1922. V. 9. P. 227–249.

747. Dall P.C. A sampling technique for littoral stone dwelling organisms // Oikos. 1979. V. 33. No 1. P. 106–112.

748. Dashkova V., Malashenkov D., Poulton N., Vorobjev I., Barteneva N.S. Imaging flow cytometry for phytoplankton analysis // Methods. 2017. V. 112 (Suppl. C). P. 188–200.

749. De Bovvee F., Albert P., Soyer J. The importance of the mesh size for the extraction of the muddy bottom meiofauna // Limnol. Oceanogr. 1974. V. 19. No 2. P. 350–354.

750. De Jonge V.N., Bouwman L.A. A simple density separation technique for quantitative isolation of meiobenthos using the colloidal silica Ludax-TM // Mar. Biol. 1977. V. 42. No 2. P. 143–148.

751. De Silva R.K. The factors affecting the feeding of Dendrocoelum lacteum (Muller) (Turbellaria, Tricladida) on Asellus aquaticus (L.) (Crustacea, Isopoda) // Arch. Hydrobiol. 1976. Bd. 77. No 4. S. 347–374.

752. Declerck S.A.J., Coronel J.S., Legendre P., Brendonck L. Scale dependency of processes structuring metacommunities of cladocerans in temporary pools of High-Andes wetlands // Ecography. 2011. V. 34. P. 296–305. DOI:https://doi.org/10.1111/j.1600-0587.2010.06462.x

753. del Giorgio P.A., Cole J.J. Bacterial growth efficiency in natural aquatic systems // Ann. Rev. Ecol. Syst. 1998. V. 29. P. 503–541.

754. Desmarais K.H. Keeping Daphnia out of the surface film with cetyl alcohol // Journal of Plankton Research. 1997. V. 19. No 1. P. 149–154.

755. Díaz S., Cabido M. Vive la diffe´rence: plant functional diversity matters to ecosystem processes // Trends in Ecology & Evolution. 2001. V. 16. P. 646–655.

756. Doma S. Ephippia of Daphnia magna Straus – A technique for their mass production and quick revival // Hydrobiologia. 1979. V. 67. P. 183–188.

757. Dorak Z., Köker L., Gürevin C., Saç G. How do environmental variables affect the temporal dynamics of zooplankton functional groups in a hyper eutrophic wetland? // Environmental Science and Pollution Research. 2023. V. 30. P. 97115–97127. DOI:https://doi.org/10.1007/s11356-023-29252-8

758. Ducklow H.W. Bacterial production and biomass in the oceans // Microbial ecology of the oceans, Chapter 4 / Kirchman D.L. (ed.). New York: Wiley-Liss, 2000. P. 85–120.

759. Dumont H.J., Van de Velde I., Dumont S. The dry weight estimate of biomass in a selection of Cladocera, Copepoda and Rotifera from the plankton, periphyton and benthos of continental waters // Oceologia. 1975. V. 19. P. 75–97.

760. Douglas G.M., Maffei V.J., Zaneveld J.R. et al. () PICRUSt2 for prediction of metagenome functions // Nature Biotechnology. 2020. V. 38. P. 685–688. DOI:https://doi.org/10.1038/s41587-020-0548-6

761. Ebert D. Ecology, epidemiology, and evolution of parasitism in Daphnia. National Library of Medicine, 2005. 98 p.

762. Ebert D. Daphnia as a versatile model system in ecology and evolution // EvoDevo. 2022. V. 13. No 1. P. 16.

763. Edgerton B.F., Evans L.H., Stephens F.J., Overstreet R.M. Synopsis of freshwater crayfish diseases and commensal organisms // Aquaculture. 2002. V. 206. No 1–2. P. 57–135.

764. Edler L. Phytoplankton counts. Results and analysis of the intercalibration Experiments // Interim Baltic Marine Environment Protection Commission. 1979. 20 p.

765. Edler L., Elbrächter M. The Utermöhl method for quantitative phytoplankton analysis // Microscopic and molecular methods for quantitative phytoplankton analysis. Intergovernmental Oceanographic Commission Manuals and Guides 55. UNESCO, Paris. 2010. 114 p.

766. Edmondson W.T., Winberg G.G. A manual on methods for the assessment of secondary productivity in fresh waters / IBP Handbook. No. 17. F.A. Davis, Philadelphia: Blackwell Sci. Publ., Oxford and Edinburgh. 1971. 358 p.

767. Elendt B.P., Bias W.R. Trace nutrient deficiency in Daphnia magna cultured in standard medium for toxicity testing. Effects of the optimization of culture conditions on life history parameters of D. magna // Water research. 1990. V. 24. No 9. P. 1157–1167.

768. Elliott J.M. Invertebrate drift in a Dartmoor stream // Arch. Hydrobiol. 1967. V. 63. P. 202–237.

769. Elliott J.M. Methods of sampling invertebrate drift in running water // Ann. Limnol. 1970. V. 6. P. 133–159.

770. Elliott J.M. Time spent in the drift by downstream-dispersing invertebrates in a Lake District stream // Freshwater Biology. 2002. V. 47. P. 97–106.

771. Elliott J.M., Drake C.M. A Comparative Study of Seven Grabs used for Sampling Benthic Macroinvertebrates in Rivers // Freshwater biology. 1981. V. 11. Is. 2. P. 99–120.

772. Elliot J.W. Some methods for the Statistical Analysis of Samples of Bentic Invertebrates // Freshwater Biological Association Scientific Publications. 1977. V. 25. 159 р.

773. Elliott D.T., Tang K.W. Simple staining method for differentiating live and dead marine zooplankton in field samples // Limnol. Oceanogr.: Methods. 2009. V. 7. P. 585–594.

774. Elliott D.T., Tang K.W. Spatial and temporal distributions of live and dead Copepods in the lower Cheasapeake Bay (Virginia, USA) // Estuaries Coasts. 2011. V. 34. Is. 5. P. 1039–1048.

775. Elouard J.-M. Un nouveau type de substrat artificiel de surface pour echantilloner la faune invertebree lotique // Rev. hydrobiol. trop. 1984. V. 17. No 1. P. 77–81.

776. Epigenetics: linking genotype and phenotype in development and evolution / Hallgrimsson B., Hall B. K. (ed.). Univ of California Press, 2011. 472 p.

777. Falkowski P., Kiefer D.A. Chlorophyll a fluorescence in phytoplankton: relationship to photosynthesis and biomass // J. Plankton Res. 1985. V. 7. No 5. P. 715–731.

778. Fast A.W. An avaluation of the efficiency of zoobethos separation by sugar flotation // Progr.Fish-Cult. 1970. V. 32. No 4. P. 212–216.

779. Fauna Aquatic a Austriaca, Edition 2002 / Moog O. (Ed.). Wasserwirtschaftskataster, Bundesministerium für Land- und Forstwirtschaft, Umwelt und Wasserwirtschaft, Vienna, 2002.

780. Fauna Aquatica Austriaca, 3. Edition 2017 / Moog O., Hartmann A. (Eds.). Bundesministerium für Land- und Forstwirtschaft, Umwelt und Wasserwirtschaft, Vienna, 2017.

781. Fenchel T. The ecology of marine microbenthos. I. The quantitative importance of ciliates as compared with metazoans in various types of sediments // Ophelia. 1967. V. 4. P. 121–137.

782. Findlay S. Thymidine incorporation into DNA as an estimate of sediment bacterial production // Handbook of Methods in Aquatic Microbial Ecology / Kemp P.F. et al. (eds.). Boca Raton, Ann Arbor: Lewis Publishers, 1993. P. 505–508.

783. Fink P. Ecological functions of volatile organic compounds in aquatic systems // Marine and Freshwater Behaviour and Physiology. 2007. V. 40. P. 155–168.

784. Fleming G.M., Coughlan J. Preservation of vitally stained zooplankton for live/dead sorting // Estuaries. 1978. V. 1. No 2. P. 132–135.

785. Foysal M.J. Host habitat shapes the core gut bacteria of decapod crustaceans: A meta-analysis // Heliyon. 2023. V. 9. No 6. P. e16511.

786. Francoeur S.N., Rier S.T., Whorley S.B. Methods for Sampling and Analyzing Water ecosystems Algae // Wetland Techniques: Volume 2: Organisms / J.T. Anderson and C.A. Davis (eds.). Springer Nature, Dordrecht, 2013. P. 1–58.

787. Frenken T., Alacid E., Berger S. A., Bourne E.C., Gerphagnon M. et al. Integrating chytrid fungal parasites into plankton ecology: research gaps and needs // Environmental Microbiology. 2017. V. 19(10). P. 3802–3822. DOI:https://doi.org/10.1111/1462-2920.13827

788. Fundamentals of aquatic ecosystems. Oxford etc.: Blackwell, 1980. 229 p.

789. Furstenberg J.P., de Wet A.G. A comparison of two extractors for separating meiobenthic nematodes from fine-grained sediments. South African Journal of Zoology. 1982. V. 17. No 1. P. 41–43. DOI:https://doi.org/10.1080/02541858.1982.11447777

790. García-Chicote J., Armengol X., Rojo C. Zooplankton abundance: A neglected key element in the evaluation of reservoir water quality // Limnologica. 2018. V. 69. P. 46–54. DOI:https://doi.org/10.1016/j.limno.2017.11.004

791. Gibb J.T., Oseto C. Insect Collection and Identification Techniques for the Field and Laboratory. Arthropod Collection and Identification, Second Edition. London: Academic Press. 2019. 354 p.

792. Giddings J.M. Effects of the water-soluble fraction of a coal-derived oil on pond microcosm // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1982. V. 11. P. 735741.

793. Giere O. Meiobenthology: The Microscopic Fauna in Aquatic Sediments. Springer-Verlag Berlin Heidelberg, 1993. 328 p.

794. Gliwicz Z.M. On the different nature of top-down and bottom-up effects in pelagic food webs // Freshwater Biol. 2002. V. 47. P. 2296.

795. Gray C., Figueroa D.H., Hudson L.N., Ma A., Perkins D., Woodward G. Joining the dots: an automated method for constructing food webs from compendia of published interactions // Food Webs. 2015. V. 5. P. 11–20. DOI:https://doi.org/10.1016/j.fooweb.2015.09.001

796. Grossart H.-P., Hassan E.A., Masigol H., Arias-Anders M., Rojas-Jimenez K. Inland water fungi in the antropocene: current and future perspectives // Encyclopedia of inland waters. 2nd edition. Chapter. 2021. DOI: 1010161/B978-0-12-819166-8.00025-6

797. Gonzalez J.M., Suttle C.A. Grazing by marine nanoflagellates on viruses and viral-sized particles ingestion and digestion // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1993. V. 94. P. 1–10.

798. Goodnight C.J., Whitley L.S. Oligochetes as indicators of pollution // Proc. 15-th Ind. Waste Conf., Pardue Univ. Ext., Sec. 1961. V. 106. P. 139–142.

799. Gomes M.P., Garcia Q.S., Barreto L.C., Pimenta L.P.S., Matheus M.T., Figueredo C.C. Allelopathy: An overview from micro- to macroscopic organisms, from cells to environments, and the perspectives in a climate-changing world // Biologia. 2017. V. 72(2). P. 113–129. DOI:https://doi.org/10.1515/biolog-2017-0019

800. Gomes L.F., Pereira H.R., Gomes A.C.A.M., Vieira M.C., Martins P.R., Roitman I., Vieira L.C.G. Zooplankton functional-approach studies in continental aquatic environments: a systematic review // Aquat. Ecol. 2019. V. 53. P. 191–203.

801. Gopal B., Goel U. Competition and Allelopathy in Aquatic Plant Communities // The Botanical Review. 1993. V. 59. No 3. P. 155–210.

802. Gorokhova E., Rivetti C., Furuhagen S., Edlund A., Ek K., Breitholtz M. Bacteria-mediated effects of antibiotics on Daphnia nutrition // Environmental science & technology. 2015. V. 49. No 9. P. 5779–5787.

803. Gough H.L., Stahl D.A. Optimization of direct cell counting in sediment // J. Microbiol. Methods. 2003. V. 52. No 1. P. 39–46.

804. Goździejewska A.M., Koszałka J., Tandyrak R., Grochowska J., Parszuto K. Functional responses of zooplankton communities to depth, trophic status, and ion content in mine pit lakes // Hydrobiologia. 2021. V. 848. P. 2699–2719. DOI:https://doi.org/10.1007/s10750-021-04590-1

805. Grahn O., Hultberg H., Landner L. Oligotrophication: A self–accelerating process in lakes subjected to excessive supply of acid substances // Ambio. 1974. V. 3. P. 93–94.

806. Gray J.S. Sample size and sample frequency in relation to the quantitative sampling of sand meiofauna // Smithsonian Contribs. Zool. 1971. No 76. P. 191–197.

807. Gray J.S. Effects of environmental stress on species rich assemblages // Biol. J. Linn. Sos.1989. V. 37. No 1–2. P. 19–32.

808. Guillou L., Bachar D., Audic S. et al. The Protist Ribosomal Reference Database (PR2): A Catalog of Unicellular Eukaryote Small Sub-Unit RRNA Sequences with Curated Taxonomy // Nucleic Acids Res. 2012. V. 41. P. D597–D604. DOI:https://doi.org/10.1093/nar/gks1160

809. Gulati R.D. Zooplankton structure in the Loosdrecht lakes in relation to trophic status and recent restoration measures // Hydrobiologia. 1990. V. 191. P. 173–188.

810. Haberman J., Laugaste R. On characteristics reflecting the trophic state of large and shallow Estonian lakes (L. Peipsi, L. Võrtsjarv) // Hydrobiologia. 2003. V. 506–509. P. 737–744.

811. Hagstrom A., Larsson U., Hоrst.edt P., Normark S. Frequency of dividing cells, a new approach to the determination of bacterial growth rates in aquatic environments // Appl. Environ. Microbiol. 1979. V. 37. P. 805–812.

812. Hakkari L. Zooplankton species as indicators of environment // Aqua Fennica. 1972. P. 46–54.

813. Hallas T.E., Yeates G.W. Tardigrada of the soil and litter of Danish beech forest // Pedobiologia. 1972. V. 12. P. 287–304. DOI:https://doi.org/10.1016/S0031-4056(23)02046-2

814. Hammer Ø., Harper D.A.T., Ryan P.D. Past: Paleontological Statistics Software Package for Education and Data Analysis // Palaeontologia Electronica. 2001. V. 4. Is. 1, art. 4. 9 p.

815. Haney J.F. Regulation of cladoceran filtering rates in nature by body size, food concentration, and diel feeding patterns // Limnology and Oceanography. 1985. V. 30. No 2. P. 397–411.

816. Haney J.F., Hall D.J. Sugar-coated Daphnia: Apreservation technique for Cladocera // Limnol. and Oceanog. 1973. V. 18. No 2. P. 331–333.

817. Handbook of Methods in Aquatic Microbial Ecology / Eds Kemp P.F. et al. Boca Raton: Lewis Publ., 1993. 777 p. ISBN 0-87371-564-0

818. Hart D.R., Stone L., Berman T. Seasonal dynamics of the Lake Kinneret food web: The importance of the microbial loop // Limnol., Oceanogr. 2000. V. 45. No 2. Р. 350–361.

819. Harvey G.L., Clifford N.J., Gurnell A.M. Towards an ecologically meaningful classification of the flow biotope for river inventory, rehabilitation, design and appraisal purposes // J. Environ. Manage. 2008. V. 88. P. 638–650.

820. Hauer F.R., Resh V.H. Macroinvertebrates // Methods in stream ecology / Hauer F.R., Lamberti G.A., editors, 2nd edition. Academic Press, San Diego, CA, 2007. P. 435–463. DOI:https://doi.org/10.1016/B978-012332908-0.50028-0

821. Hauer R., Lamberti G.A. Methods in Stream Ecology. 2-nd ed. Amsterdam; Boston: Acad. Press, 2007. 878 p.

822. Heino J., Grönroos M., Ilmonen J., Karhu T., Niva M., Paasivirta L. Environmental heterogeneity and β diversity of stream macroinvertebrate communities at intermediate spatial scales // Freshw. Sci. 2013. V. 32. P. 142–154. DOI:https://doi.org/10.1899/12-083.1

823. Hensen V. Über die Bestimmung des Planktons oder des im Meer treibenden Materials an Pflanzen und Thieren // Jahresbericht der Kommission zur Wissenschaftlichen Untersuchung der deutschen Meere für die Jahre 1882 bis 1886. 1887. Bd. 5. 109 s.

824. Herman P.M.J., Heip C. Growth and respiration of Cyprideis torosa Jones (Crustacea: Ostracoda) // Oecologia. 1982. V. 54. No 3. P. 300–303.

825. Herman P.M.J., Heip C. The respiration of five brackish-water harpacticoid copepod species // J. Exp. Mar. Biol. and Ecol. 1983. V. 71. No 3. P. 249–256.

826. Herman P.M.J., Heip C., Vranken G. The production of Cyprideis torosa Jones (Crustacea: Ostracoda) // Oecologia. 1983. V. 58. No 3. P.326–331.

827. Herman P.M.J., Vranken G., Heip C. Problems in meiofauna energy-flow studies // Hydrobiologia. 1984. V. 118. No 1. P. 21–28.

828. Hernández-Pérez A., Söderhäll I. Intestinal microbiome in crayfish: Its role upon growth and disease presentation // Developmental & Comparative Immunology. 2023. V. 145. P. 104703.

829. Hieber M., Robinson C.T., Uehlinger U. Seasonal and diel patterns of invertebrate drift in different alpine stream types // Freshwater Biology. 2003. V. 48. P. 1078–1092.

830. Hildebrand M., Davis A., Abbriano R., Pugsley H.R., Tralller J.C., Smith S.R., Shrestha R.P., Cook O., Sánchez-Alvarez E.L., Manandhar-Shrestha K., Alderete B. Applications of imaging flow cytometry for microalgae // Methods and Protocols / Barteneva N., Vorobjev I. editor. Imaging Flow Cytometry: New York, NY: Springer, 2016. P. 47–67.

831. Hillebrand H., Durselen C.D., Kirschtel D. et al. Biovolum calculation for pelagic and benthic microalgae // J. Phycol. 1999. V. 35. P. 403–424.

832. Higgins R.P., Thiel H. Introduction to the study of meiofauna. Wash., Lond.: Smithsonian Institution Press, 1988. 488 p.

833. Hillbricht-Ilkowska A., Stanczykowska A. The production and standing crop of planktonic larvae of Dreissena polymorpha (Pallas) in two Mazurian lakes // Pol. Arch. Hydrobiol. 1969. V. 16(29). No 2. P. 193–203.

834. Hilton J., Lishman J.P., Carrick T.R., Allen P.V. An assessment of the sources of error in estimations of bulk sedimentary pigment concentrations and its implications for trophic status assessment // Hydrobiologia. 1991. V. 218. No 3. P. 247–254.

835. Hofstraat J.W. Phytoplankton monitoring by flow cytometry // Journal Plankton Research. 1994. V. 16(9). P. 1197–1224.

836. Holm-Hansen O.C.J., Lorenzen C.J., Holmes R.W., Strickland J.D.H. Fluorometric determination of chlorophyll // J. Cons. Int. Explor. Mer. 1965. V. 30. No 1. P. 3–15.

837. Holmes R.W., Widrig T.M. The Enumeration and Collection of Marine Phytoplankton // CES Journal of Marine Science. 1956. V. 22. Is. 1. P. 21–32. DOI:https://doi.org/10.1093/icesjms/22.1.21

838. Holt C.C., Del Campo J., Keeling P.J. Source and variation of the amazing live Sea-Monkey microbiome // PloS one. 2024. V. 19. No 8. P. e0308763.

839. Hrytsynyak I., Shvets T. Methods of hydrobiological research. Thematic bibliography // Ribogospod. nauka Ukr. 2019. V. 2(48). P. 108–127. DOI:https://doi.org/10.15407/fsu2019.02.108

840. Hu H., Hong Y. Algal-bloom control by allelopathy of aquatic macrophytes – A review // Frontiers of Environmental Science & Engineering in China. 2008. V. 2(4). P. 421–438.

841. Humburger K., Dall P.C. The respiration of common benthic invertebrate species from the shallow littoral zone of Lake Esrom, Denmark // Hydrobiologia. 1990. V. 199. No 2. P. 117–130.

842. Hummon W.D. Extraction by sieving: a biased procedure in studies of stream meiobenthos. Transactions of the American Microscopical Society. 1981. 100, 278e284. DOI:https://doi.org/10.2307/3225553

843. Hutchinson G.E. The algal benthos // A treatise on limnology. V. 3. Limnological botany. John Wiley & Sons, New York, 1975. P. 509–571.

844. Hyde K.D, Swe A, Zhang K.Q. Nematode-Trapping Fungi. Chapter 1. Nematode-Trapping Fungi // Nematode-Trapping Fungi / K.D. Hyde (Ed.). Fungal Diversity Research Series. 2014. V. 23. P. 1–12.

845. Hydrological and Limnological Aspects of Lake Monitoring By Andre Van der Beken John Wiley & Sons, New York. 400 p.

846. Imbert J.B. Perry J.A. Drift and benthic invertebrate responses to stepwise and abrupt increases in non-scouring flow // Hydrobiologia. 2000. V. 436. P. 191–208.

847. Innes D.J., Hebert P.D.N. The origin and genetic basis of obligate parthenogenesis in Daphnia pulex // Evolution. 1988. V. 42. No 5. P. 1024–1035.

848. IOCCG Protocol Series. Aquatic Primary Productivity Field Protocols for Satellite Validation and Model Synthesis. IOCCG Ocean Optics and Biogeochemistry Protocols for Satellite Ocean Colour Sensor Validation / R.A. Vandermeulen, J.E. Chaves (Eds.). 2022. V. 7.0. IOCCG, Dartmouth, NS, Canada. DOI:https://doi.org/10.25607/OBP-1835

849. Jaccard P. Distribution de la flore alpine dans le Bassin des Dranses et dans quelques regions voisines // Bull. Soc. VauDOIse sci. Natur. 1901. V. 37. Bd. 140. P. 241–272.

850. Jackson D. A manually operated core-sampler suitable for use on fine-particulate sediments // Estuarine Coastal Shelf Sci. 1986. V. 23. P. 419–422.

851. Jagadeesan L., Jyothibabu R. Tumour-like anomaly of copepods an evaluation of the possible causes in Indian marine waters // Environmental monitoring and assessment. 2016. V. 188. P. 1–24.

852. Javornicky P. Die Revision einiger Methoden zum Feststellen der Quantitiit des Phytoplanktons. (Revise nekterych metod pro zjistovani kvantity fytoplanktonu) // Sb. vys. Sk. chem.-teehnol. Praze, Oddil faeulty technologie paliv, a vody. Prague, 1958. Bd. 2. No 1. S. 283–367.

853. Jeffrey S.W., Humphrey G.F. New spectrophotometric equations for determining chlorophylls a, b, c1 and c2 in higher plants, algae and natural phytoplankton // Biochem. Physiol. Pflanz. 1975. Вd. 167. No 2. P. 191–194.

854. Jennings P.G. The signy Island terrestrial reference sites: Oxygen uptake of Macrobiotus furciger J. Murrey (Tardigrada) // Bull. Brit. Antarctic survey. 1975. No 41–42. P. 161–168.

855. Jiang X, Xiang M, Liu X. Nematode-trapping fungi // Microbiol Spectrum. 2016. V. 5. No 1. FUNK-0022-2016. DOIhttps://doi.org/10.1128/microbiolspec.FUNK-0022-2016.

856. Jilani G., Mahmood S., Chaudhry A. N., Hassan I., Akram M. Allelochemicals: sources, toxicity and microbial transformation in soil – a review // Annals of Microbiology. 2008. V. 58(3). P. 351–357. DOI:https://doi.org/10.1007/bf03175528

857. Jllies I. Die Barbenregion mitteleuropaischer Fliessgewasser // Verh. Zutern. Verein. Limnol. 1958. No 13. Р. 834–844.

858. Jochem F. On the distribution and importance of picocyanobacteria in a boreal inshore area (Kiel Bight, Western Baltic) // J. Plankt. Res. 1988. V. 10. No 5. P. 1009–1022.

859. Joint I., Pomroy A., Savidge G., Boyd P. Size-fractionated primary productivity in the northeast Atlantic in May-July 1989 // Deep-Sea Res. 1993. II. V. 40. P. 423–440.

860. Johnson T.W.J., Ferchau H.A., Gold H.S. Isolation, culture, growth and nutrition of some lignicolous marine fungi // Phyton. 1959. V. 12. P. 65–80.

861. Johnston D.W., Cross T. Actinomycetes in lake muds: dormant spores or active mycelium? // Freshwater Biology. 1976. V. 6. No 5. P. 465–470.

862. Jones E.B.G, Sakayaroj J, Suetrong S, Somrithipol S, Pang K.L. Classification of marine Ascomycota, anamorphic taxa and Basidiomycota // Fungal Diversity. 2009. V. 35. P. 1–187.

863. Jones E.B.G., Hyde K.D., Pang K.L. Freshwater fungi and fungal-like organisms. Walter de Gruyter, Berlin, 2014. 510 p.

864. Jones E.B.G. Suetrong S, Sakayaroj J, Bahkali A.H, Abdel-Wahab M.A, Boekhout T, Pang K-L. Classification of marine Ascomycota, Basidiomycota, Blastocladiomycota and Chytridiomycota // Fungal Diversity. 2015. V. 73. P. 1–72. DOI:https://doi.org/10.1007/s13225-015-0339-4

865. Jones E.B.G., Pang K-L., Abdel-Wahab M.A., Scholz B., Hyde K., Boekhout D.T., Ebel, R., Rateb M.E., Henderson L., Sakayaroj J., Suetrong S., Dayarathne M.C., Kumar V., Raghukumar S., Sridhar K.R., Bahkal A.H.A., Gleason F.H., Norphanphoun C. An online resource for marine fungi // Published. 2019. V. 96. P. 347–433.

866. Kajak Z, Kacprzak K, Polkowski R. Chwytaczrurowy do probierania prob dna // Ekologia Polska Seria B. 1965. V. 11. P. 159–165. (In Polish with English summary)

867. Kalninš M. Protected aquatic insects of Latvia – Graphoderus bilineatus (DeGeer, 1774) (Coleoptera: Dytiscidae) // Latvijas entomologs. 2006. V. 43. P. 132–137.

868. Kaplan L.A., Bott T.L., Bielicki J.K. Assessment of [3H] thymidine incorporation into DNA as a method to determine bacterial productivity in stream bed sediments // Appl. Environ. Microbiol. 1992. V. 58. Nо 11. P. 3614–3621. DOI:https://doi.org/10.1128/aem.58.11.3614-3621.1992

869. Kawaguchi Y., Nakano S. Contribution of terrestrial invertebrates to the annual resource budget for salmonids in forest and grassland reaches of a headwater stream // Freshwater Biology. 2001. V. 46. Is. 3. P. 303–316.

870. Keating K.I., Dagbusan B.C. Effect of selenium deficiency on cuticle integrity in the Cladocera (Crustacea) // Proceedings of the National Academy of Sciences. 1984. V. 81. No 11. P. 3433–3437.

871. Kelly M.G., Cazaubon A., Coring E., Dell’Uomo A., Ector L., Goldsmith B., Guasch H., Hürlimann J., Jarlmann A., Kawecka B., Kwandrans J., Laugaste R., Lindstrom E.A., Leitao M., Marvan P., Padisák J., Pipp E., Prygiel J., Rott E., Sabater S., van Dam H., Vizinet J. Recommendations for the routine sampling of diatoms for water quality assessment in Europe // J. appl. Phycol. 1998. V. 10. P. 215–224.

872. Kepner R.L. Jr, Pratt J.R. Use of fluorochromes for direct enumeration of total bacteria in environmental samples: past and present // Microbiol. Rev. 1994. V. 58. P. 603–615.

873. Keys to Palaearctic Fauna. Thorp and Covich’s Freshwater Invertebrates. V. IV: 4th edn. / Ed. D.C. Rogers, J.H. Thorp. Academic Press, 2019. 920 p.

874. Ki J.S. Hypervariable regions (V1–V9) of the dinoflagellate 18S rRNA using a large dataset for marker considerations // J. Appl. Phycol. 2012. V. 24. P. 1035–1043. DOI:https://doi.org/10.1007/s10811-011-9730-z

875. Kilham S.S., Kreeger D.A., Lynn S.G., Goulden C.E., Herrera L. COMBO: a defined freshwater culture medium for algae and zooplankton // Hydrobiologia. 1998. V. 377. No 1. P. 147–159.

876. Klekowski R., Wasilewska L., Paplinska E. Oxygen consumption by soilinhabiting nematodes // Nematologica. 1972. V. 18. P. 391–403.

877. Klindworth A., Pruesse E., Schweer T. et al. Evaluation of general 16S ribosomal RNAgene PCR primers for classical and next‐generation sequencing‐based diversity studies // Nucleic Acids Research. 2013. V. 41. e1. DOI:https://doi.org/10.1093/nar/gks808

878. Kluge N.J. The phylogenetic system of Ephemeroptera. Kluwer Academic Publishers. 2004. 456 p.

879. Klüttgen B., Dülmer U., Engels M., Ratte H.T. ADaM, an artificial freshwater for the culture of zooplankton // Water research. 1994. V. 28. No 3. P. 743–746.

880. Knapp M. Preservative fluid and storage conditions alter body mass estimation in a terrestrial insect // Entomologia Experimentalis et Applicata. 2012. V. 143. P. 185–190.

881. Knap A., Michaels A., Close A. et al. Protocols for the joint global ocean flux study (JGOFS) core measurements // JGOFS Report Nr. 19. Reprint of the IOC Manuals and Guides No. 29. UNESCO, Bergen. 1996.

882. Krylova J., Kurashov E. Potential applications of the low-molecular-weight metabolome of Synechocystis aquatilis Sauvageau, 1892 (Cyanophyceae: Merismopediaceae) // Algae Biotechnology: Integrated Algal Engineering for Bioenergy, Bioremediation, and Biomedical Applications / Eds.: Ashfaq Ahmad, Fawzi Banat, Hanifa Taher. Elsevier, 2022. P. 347–376. DOI:https://doi.org/10.1016/B978-0-323-90476-6.00021-2

883. Krylova J., Kurashov E. Characteristics of the Low Molecular Weight Metabolome of Potamogeton natans L. (Potamogetonaceae) from Lakes of Different Trophic State (Karelian Isthmus, Northwest Russia) // Global Journal of Botanical Science. 2023. V. 11. P. 1–15. DOI:https://doi.org/10.12974/2311-858X.2023.11.01

884. Koese B., Cupper J. Sampling methods for Graphoderus bilineatus (Coleoptera: Dytiscidae) // Nederlandse Faunistische Mededelingen, 2006. V. 24. P. 42–47.

885. Koksharova O.A. Cyanobacterial VOCs as Allelopathic Tools // Bacterial Volatile Compounds as Mediators of Airborne Interactions. Springer, Singapore, 2020. P. 257–280. DOI:https://doi.org/10.1007/978-981-15-7293-7_11

886. Kopytina N.I., Bocharova E.A. Fouling communities of microscopic fungi on various substrates of the Black Sea // Biosystems Diversity. 2021. V. 29(4). P. 345–353. DOI:https://doi.org/10.15421/012144

887. Kotwicki L., Troch M.D., Urban-Malinga B., Gheskiere T., Węslawski J.M. Horizontal and vertical distribution of meiofauna on sandy beaches of the North Sea (The Netherlands, Belgium, France) // Helgoland Marine Research. 2005. V. 59(4). P. 255–264. DOI:https://doi.org/10.1007/s10152-005-0001-8

888. Kubichek F. Eine neue Methode der quantitativen Entnahme der organischen Drift // Zool. Listy. 1966. V. 15. P. 284–286.

889. Kuczyńska-Kippen N., Špoljar M., Zhang C, Pronin M. Zooplankton functional traits as a tool to assess latitudinal variation in the northern-southern temperate European regions during spring and autumn seasons // Ecol. Indic. 2020. 117:106629

890. Kulk, G., Platt, T., Dingle, J. et al. Primary production, an index of climate change in the ocean: Satellite-based estimates over two decades // Remote Sensing. 2020. V. 12. No 5. P. 826. DOI:https://doi.org/10.3390/rs12050826.

891. Kurashov E.A. The role of meiobenthos in lake ecosystems // Aquatic Ecology. 2002. V. 36. P. 447–463. DOI:https://doi.org/10.1023/A:1016535921472

892. Kurashov E.A., Krylova J.V., Mitrukova G.G., Chernova A.M. Low-molecular-weight metabolites of aquatic macrophytes growing on the territory of Russia and their role in hydroecosystems // Contemporary Problems of Ecology. 2014a. V. 7(4). P. 433–448. DOI:https://doi.org/10.1134/S1995425514040064

893. Kurashov E.A., Krylova J.V., Mitrukova G.G., Chernova A.M. The regularities of synthesis of low-molecular weight organic compounds by water macrophytes depending on biotic and abiotic factors // Lakes: The Mirrors of the Earth. Balancing Ecosystem Integrity and Human Wellbeing. Volume 2: Proceedings of the 15th World Lake Conference. Eds. Chiara Biscarini, Arnaldo Pierleoni, Luigi Naselli-Flores. Science Press, 2014b. P. 19–23.

894. Kurashov E.A., Fedorova E.V., Krylova J.V., Mitrukova G.G. Assessment of the Potential Biological Activity of Low Molecular Weight Metabolites of Freshwater Macrophytes with QSAR // Scientifica. 2016. V. 2016. Article ID 1205680. 9 p. DOI:https://doi.org/10.1155/2016/1205680

895. Kurashov E.A., Mitrukova G.G., Krylova Yu.V. Interannual Variability of Low–Molecular Metabolite Composition in Ceratophyllum demersum (Ceratophyllaceae) from a Floodplain Lake with a Changeable Trophic Status // Contemporary Problems of Ecology. 2018. V. 11. No 2. P. 179–194. DOI:https://doi.org/10.1134/S1995425518020063

896. Kurashov E., Krylova J., Protopopova E. The Use of Allelochemicals of Aquatic Macrophytes to Suppress the Development of Cyanobacterial “Blooms” // Plankton Communities. IntechOpen, London, 2021. DOI:https://doi.org/10.5772/intechopen.95609

897. Kurashov E.A., Fedorova E.V., Krylova J.V., Kapustina L.L., Mitrukova G.G., Protopopova E.V. Using SAR Methodology for Identification of Freshwater Macrophyte Allelochemicals with High Anti-Cyanobacterial Effect against Planktonic Cyanobacteria // Journal of Siberian Federal University. Biology. 2023. V. 16(2). P. 232–251.

898. Kurashov E.A., Krylova J.V., Chernova A.M., Khodonovich V.V., Yavid E.Ya. On the Ecosystem and Indicator Significance of Fatty Acids in the Low Molecular Weight Metabolome of Water Macrophytes // Inland Water Biology. 2024. V. 17. No 5. P. 921–925. DOI:https://doi.org/10.1134/S1995082924700585

899. Kurbatova S., Berezina N., Sharov A., Chernova E., Kurashov E., Krylova Y., Yershov I., Mavrin A., Otyukova N., Borisovskaya E., Fedorov R. Effects of Algicidal Macrophyte Metabolites on Cyanobacteria, Microcystins, Other Plankton, and Fish in Microcosms // Toxins. 2023. V. 15. P. 529. DOI:https://doi.org/10.3390/toxins15090529

900. Laforsch C., Tollrian R. Extreme helmet formation in Daphnia cucullata induced by small-scale turbulence // Journal of Plankton Research. 2004. V. 26. No 1. P. 81–87.

901. Laine M.B., Martin‐Creuzburg D., Litmanen J.J., Taipale S.J. Sterol limitation of Daphnia on eukaryotic phytoplankton: a combined supplementation and compound‐specific stable isotope labeling approach // Oikos. 2024. V. 2024. No 6. P. e10359.

902. LaMontagne J.M., McCauley E. Maternal effects in Daphnia: what mothers are telling their offspring and do they listen? // Ecology Letters. 2001. V. 4. No 1. P. 64–71.

903. Lampert W. Feeding and nutrition in Daphnia // Daphnia. 1987. P. 143–192.

904. Lampert W. Daphnia: development of model organism in ecology and evolution. International Ecology Institute, 2011. 250 p.

905. Lapirov A.G., Belyakov E.A., Lebedeva O.A., Kurashov E.A., Krylova J.V. Effect of Algicide Based on Metabolites (Allelochemicals) of Aquatic Plants on Seed Germination and the Development of Seedlings of Three Species of Helophytes // Inland Water Biology. 2023. V. 16. P. 1062–1071. DOI:https://doi.org/10.1134/S1995082923060159

906. Laxson C.L., Mcphedran K.N., Makarewicz J.C., Telesh I.V., Macisaac H.J. Effects of the non-indigenous cladoceran Cercopagis pengoi on the lower food web of lake Ontario // Freshwater Biology. 2003. V. 48. P. 2094–2106.

907. Lazareva V.I. Response of zooplankton communities to acidification in lakes of northern Russia // Russian J. of Aquat. Ecology. 1995. No 4 (1). P. 41–54.

908. Lee S., Fuhrman J.A. Relationships between biovolume and biomass of naturally derived marine bacterioplankton // Appl. Environ. Microbiol. 1987. V. 53. No 6. P. 1298–1303.

909. Lefler J.W. Aquatic microcosms and stress criteria for as¬sessing environmental impact of organic chemicals: Final report to the EPA, Contract 68-01-5043, T6411(7197)025. 1981.

910. Lefler J.W. The use of self-selected, generic aquatic micro¬cosm for pollution effects assessment // Concepts in marine pollution measurements, White H.H., Ed., University of Maryland. 1984. P. 139147.

911. Lemes da Silva A.L., de Macedo-Soares L.C.P., Serra S.R.Q. et al. Changes in functional diversity of aquatic invertebrates across urbanization levels in a coastal island, Brazil // Hydrobiologia. 2024. Vol. 851. P. 2731–2748. DOI:https://doi.org/10.1007/s10750-024-05490-w

912. Leopold A. Game management. New York: Charles Scribner's Sons. 1933. 481 p.

913. Levin S.A. The problem of pattern and scale in ecology // Ecology. 1992. V. 73. P. 1943–1967.

914. Livingston B.E. The distribution of the upland societies of Kent country, Michigan // Botanical Gazette. 1903. V. 35. P. 36–55.

915. Li B., Yin Y., Kang L., Feng L., Liu Y., Du Z., Tian Y., Zhang L. A review: Application of allelochemicals in water ecological restoration – algal inhibition // Chemosphere. 2020a. 128869. DOI:https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2020.128869

916. Li Y., Xu L., Letuma P., Lin W. Metabolite profiling of rhizosphere soil of different allelopathic potential rice accessions // BMC Plant Biology. 2020b. V. 20. P. 265. DOI:https://doi.org/10.1186/s12870-020-02465-6

917. Likens G.E. Primary production of inland aquatic ecosystems // Primary Productivity of the Biosphere. Berlin, Heidelberg, N.Y. 1975. P. 9–18.

918. Limnoecology: The Ecology of Lakes and Streams / Lampert W., Sommer U., 2nd edition. Oxford: Oxford University Press, 2007. 324 p. ISBN ISBN-13: 9780199213931

919. Litchman E., Ohman M.D., Kiørboe T. Trait-based approaches to zooplankton communities // J. Plankton Res. 2013. V. 35. P. 473–484. DOI:https://doi.org/10.1093/plankt/fbt019

920. Literature review and report surface sediment sampler database. Tetra Tech EM Inc., 2003. 189 p.

921. Locke A., Sprules W.G., Keller W., Pitblado J.R. Zooplankton communities and water chemistry of Sudbery area lakes: Changes related to pH recovery // Can. J. Fish. and Aquat. Sci. 1994. V. 51. P. 151–160.

922. Lohmann H. Untersuchungen zur Feststellung des vollständigen Gehaltes des Meeres an Plankton // Wiss. Meeresuntersuchungen Kiel N.F. 1908. V. 10. P. 130–370.

923. Longshaw M. Parasites, commensals, pathogens and diseases of crayfish // Biology and Ecology of crayfish. CRC Press, Boca Raton, Florida, USA. 2016. P. 171–250.

924. Lorenzen C.J. Determination of chlorophyll and pheopigments: shectrophotometric equations // Limnol. Oceanol. 1967. V. 12. No 2. P. 343–346.

925. Lorenzen C.J., Jeffrey S.W. Determination of chlorophyll in sea water.UNESCO Technical Paper in Marine Science 35. Paris: UNESCO, 1980. 20 p.

926. Lowe R.L., LaLiberte G.D. Benthic Stream Algae Distribution and Structure// Methods in Stream Ecology Edition: 2nd Publisher: Academic Press / Editors Lamberti G., F.R. Hauer. San Diego, Calif.: Academic Press/Elsevier, 2006. P. 327–356.

927. Lund J.W.G., Kipling C., Le Gren E.D. The Inverted Microscope Method of Estimating Algal Numbers and the Statistical Basis of Estimations by Counting // Hydrobiologia. 1958. V. 11. No 2. P. 143–170. DOI:https://doi.org/10.1007/BF00007865

928. Ma J., Yin X., Liu G., Song J. Intensification of Human Land Use Decreases Taxonomic, Functional, and Phylogenetic Diversity of Macroinvertebrate Community in Weihe River Basin, China // Diversity. 2024. Vol. 16. 513. DOI:https://doi.org/10.3390/d16090513

929. MacIssac H.J., Sprules W.G., Johannsson O.E., Leach J.H. Filtering impacts of larval and sessile zebra mussels (Dreissena polymorpha) in western Lake Erie // Oceologia. 1992. V. 92. P. 30–39.

930. MacIsaac E.A., Stockner J.G. Enumeration of phototrophic picoplankton by autofluorescence microscopy // Handbook of methods in aquatic microbial ecology / Eds Kemp P.F. et al. Boca Raton: Lewes Publishers, 1993. P. 187–197.

931. Macías F.A., Galindo J.L.G., García-Díaz M.D., Galindo J.C.G. Allelopathic agents from aquatic ecosystems: potential biopesticides models // Phytochemistry Reviews. 2008. V. 7. P. 155–178. DOI:https://doi.org/10.1007/s11101-007-9065-1

932. MacNeil C., Dick J.T.A., Elwood R.W. The trophic ecology of freshwater Gammarus spp. (Crustacea: Amphipoda): problems and perspectives concerning the functional group concept // Biological Reviews. 1997. V. 72. P. 349–364.

933. Mährlein M., Pätzig M., Brauns M., Dolman A.M. Length-mass relationships for lake macroinvertebrates corrected for back-transformation and preservation effects // Hydrobiologia. 2016. V. 768. P. 37–50.

934. Majdi N., Schmid-Araya, J.M., Traunspurger W. Preface: Patterns and processes of meiofauna in freshwater ecosystems // Hydrobiologia. 2020. V. 847. P. 2587–2595. DOI:https://doi.org/10.1007/s10750-020-04301-2

935. Majdi N., Traunspurger W. Production of freshwater nematodes // Ecology of Freshwater Nematodes. Ed. Walter Traunspurger. CABI, 2021. P. 247–269. DOI:https://doi.org/10.1079/9781789243635.0008

936. Makri S., Lami A., Lods-Crozet B., Loizeau J.-L. Reconstruction of trophic state shifts over the past 90 years in a eutrophicated lake in western Switzerland, inferred from the sedimentary record of photosynthetic pigments // J. Paleolimnol. 2019. V. 61. No 2. P. 129–145.

937. Manual of Environmental Microbiology, 4th Edition / Eds Yates M.V.et al. Washington, D.C.: ASM Press, 2016. 1088 p. ISBN: 978-1-555-81602-5

938. Maran E. Cell Size as a Key Determinant of Phytoplankton Metabolism and Community Structure // Annual Review of Marine Science. 2015. V. 7. P. 241–264.

939. Marie D., Brussaard C., Partensky F. et al. Flow cytometric analysis of phytoplankton, bacteria and viruses // Curr. Protoc. Cytom. 1999. V. 11. P. 1–15.

940. Martin J.E.H. Collecting, preparing and preserving insects, mites and spiders. In: The insects and arachnids of Canada. Part 1. Research Branch Canada Department of Agriculture, Publication 1643. Ottawa: Biosystematics Research Institute, 1977. 182 p.

941. Martin P., Kohlmann K., Scholtz G. The parthenogenetic Marmorkrebs (marbled crayfish) produces genetically uniform offspring // Naturwissenschaften. 2007. V. 94. P. 843–846.

942. Martin J.W., Rogers D.C., Olesen J. Collecting and processing branchiopods // Journal of Crustacean Biology. 2016. V. 36. No 3. P. 396–401.

943. Massana R., Gasol J.M., Bjørnsen P.K. et al. Measurement of bacterial size via image analysis of epifluorescence preparations: description of an inexpensive system and solutions to some of the most common problems // Sci. Mar. 1997. V. 61. P. 397–407.

944. McGill B.J., Enquist B.J., Weiher E., Westoby M. Rebuilding community ecology from functional traits // Trends in Ecology and Evolution. 2006. V. 21. P. 178–185.

945. McIntyre A.D. The meiofauna and microfauna of some tropical beaches // Journal of Zoology. 1968. V. 156. P. 377–392.

946. McLachlan A., Dye A.H., Van Der Ryst P. Vertical gradients in the fauna and oxidation of two exposed sandy beaches // South African Journal of Zoology. 1979. V. 14. P. 43–47.

947. Merritt R.W., Resh V.H., Cummins K.W. Design of Aquatic Insect Studies / An Introduction to the Aquatic Insects of North America. Kendall/Hunt Publishing Company, Dubuque, 1996. P. 12–28.

948. Merritt R.W., Cummins K.W. An Introduction to the Aquatic Insects of North America. 3rd ed. Dubuque: Iowa: Kendall/Hunt Publishing Company. 1996. 862.

949. Merritt R.W., Cummins K.W., Resh V.H. Design of Aquatic Insect Studies: collecting, sampling and rearing procedures // An Introduction to the Aquatic Insects of North America / Merritt R.W., Cummins K.W. (Eds.). 3rd Edition. Kendall Hunt Publishing Co, Iowa, 1996. P. 12–28.

950. Merritt R.W., Cummins K.W., Berg M.B. Trophic relationships of macroinvertebrates // Methods in stream ecology / Hauer F.R., Lamberti G. (Eds). San Diego: Academic Press, 2017. V. 2. P. 413–433.

951. Methods and measurements of periphyton communities: A review. American Society for Testing and Materials, Philadelphia Pa. Ed. by R.G. Wetzel. 1979. 183 p.

952. Methods for collection and analysis of aquatic biological and microbiological samples. Open-File Report 88–190 By: Britton L.J., Greeson P.E. U.S. Geological Survey, 1989. 363 p.

953. Methods for collecting algal samples as part of the national water-quality assessment program By Stephen D. Porter, Thomas F. Cuffney, Martin E. Gurtz, and Michael R. Meador U.S. GEOLOGICAL SURVEY Open-File Report 93-409 Raleigh, North Carolina, 1993. 39 р.

954. Meyers S.P., Hopper B.E. Attraction of the marine nematode, Metoncholaimus sp., to fungal substrates // Bulletin of Marine Science. 1966. V. 16. No 1. P. 142–150.

955. Meyers S.P., Hopper B.E. Studies on marine fungal-nematode associations and pant degradation // Helgoländer wissenschaftliche Meeresuntersuchungen. 1967. V. 15. P. 270–281.

956. Meyers S.P., Reynolds E.S. Occurrence of lignicolous fungi in northern Atlantic // Canad. J. Bot. 1960. V. 38. P. 217–226.

957. Millie D.F., Pigg R.J., Fahnenstiel G.L., Carrick H.J. Algal Chlorophylls: A Synopsis of Analytical Methodologies // Algae: Source to Treatment. Manual of water supply practices. Denver: American Water Works Association, 2010. P. 93–122.

958. Millie D.F., Schofield O.M.E., Kirkpatrick G.J., et al. Using absorbance and fluorescence spectra to discriminate microalgae // Eur. J. Phycol. 2002. V. 37. P. 313–322.

959. Milligan M.R. Identification Manual for the Aquatic Oligochaeta of Florida. V. I. Freshwater Oligochaetes. Florida: State of Florida Department of Environmental Protection Tallahassee,1997. 187 p.

960. Modde T., Drewes H.G. Comparison of biotic index values for invertebrate collections from natural and artificial substrates // Freshwater Biol. 1990. V. 23. No 2. P. 171–180.

961. Moens T., Sroczynska K., Adão H. Meiofauna in a changing world // Ecological Indicators. 2022. V. 138. 108769. DOI:https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2022.108769

962. Mohamed Z.A. Macrophytes-cyanobacteria allelopathic interactions and their implications for water resources management – A review // Limnologica – Ecology and Management of Inland Waters. 2017. V. 63. P. 122–132. DOI:https://doi.org/10.1016/j.limno.2017.02.006

963. Möller W.A.A., Scharf B.W. The content of chlorophyll in the sediment of the volcanic maar lakes in the Eifel region (Germany) as an indicator for eutrophication // Hydrobiologia. 1986. V. 143. No 1. P. 327–329.

964. Monakov A.V. Feeding of freshwater invertebrates. Ghent: Kenobi Productions, 2003. 373 p.

965. Moodley L., Chen G., Heip C., Vincx M. Vertical distribution of meiofauna in sediments from contrasting sites in the Adriatic sea: Clues to the role of abiotic versus biotic control // Ophelia. 2000. V. 53(3). P. 203–212. DOI:https://doi.org/10.1080/00785326.2000.10409450

966. Moore G.M. A limnological investigation of the microscopic benthic fauna of Douglas Lake, Michigan // Ecol.Monog. 1939. V. 9. P. 537–582.

967. Morgan N.C. Secondary production // The functioning of freshwaters ecosystems. JBP. 1980. No 22. P. 251–285.

968. Moriarty D.J.W. Bacterial productivity in sediments // Arch. Hydrobol. Beih. Ergeb. Limnol. 1990. H. 34. S. 183–189.

969. Morisita M. Measuring of interspecific association and similarity between communities // Memoires of the Faculty of Science, Kyushu University, Series E (Biology). 1959. No 3. P. 65–80.

970. Morse J.C., Frandsen P.B., Graf W., Thomas J.A. Diversity and ecosystem services of Trichoptera // Insects. 2019. V. 10. P. 125. DOI:https://doi.org/10.3390/insects10050125

971. Morse J.C., Yang L., Tian L. Aquatic insects of China insects useful for monitoring water quality. Nanjing: Hohai University Press, 1994. 570 p.

972. Mouillot D., Gaillard S., Aliaume C., Verlaque M., Belsher T., Troussellier M., Chi T.D. Ability of taxonomic diversity indices to discriminate coastal lagoon environments based on macrophyte communities // Ecological Indicators. 2005. V. 5(1). P. 1–17. DOI:https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2004.04.004

973. Mulderij G., Mau B., van Donk E., Gross E.M. Allelopathic activity of Stratiotes aloides on phytoplankton-towards identification of allelopathic substances // Hydrobiologia. 2007. V. 584. P. 89–100. DOI:https://doi.org/10.1007/s10750-007-0602-0

974. Mushtaq W., Siddiqui M.B., Hakeem K.R. Allelopathy. Potential for Green Agriculture // Springer Briefs in Agriculture. 2020. 69 p. DOI:https://doi.org/10.1007/978-3-030-40807-7

975. Müller K. Investigations on the organic drift in North Swedish streams // Rept. Inst. Freshwater Res. Drottningholm. 1954. V. 35. P. 133–148.

976. Müller K. Beitrag zur Methodik der Untersuchung fliessender Gewasser // Arch. Hydrobiol. 1958. V. 54. P. 567–570.

977. Myers N. Biodiversity & the precautionary principle // AMBIO. 1993. V. 22. No 2–3. P. 74–79.

978. Nakai S., Yamada S., Hosomi M. Anti-cyanobacterial fatty acids released from Myriophyllum spicatum // Hydrobiologia. 2005. V. 543. P. 71–78. DOI:https://doi.org/10.1007/s10750-004-6822-7

979. Nalepa T.F., Robertson A. Screen mesh size affects of macroand meiobenthos abundance and biomass in the Great Lakes // Can. J. Fish. Aquatic Sci. 1981. V. 38. No 9. P. 1027–1034.

980. Naman S. Rosenfeld J. Richardson J. Causes and consequences of invertebrate drift in running waters: From individuals to populations and trophic fluxes // Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 2016. V. 73(8). P. 1–14. DOI:https://doi.org/10.1139/cjfas-2015-0363

981. Nasev D., Nasev S., Gulard V. Statistische Auswertung von Planktonuntersuchungen. T.1. Theoretische Aspekte der Planktonzählung und deren Anwendung / Wiss. E. Wilgelm-Pieck-Univer. Rostock.Math. Naturwiss. R. 1978. Bd. 27. No 4. S. 349–355.

982. Ndatimana G., Nantege D., Arimoro F.O. A review of the application of the macroinvertebrate based multimetric indices (MMIs) for water quality monitoring in lakes // Environmental Science and Pollution Research. 2023 30: 73098–73115. DOI:https://doi.org/10.1007/s11356-023-27559-0

983. Newrkla P. Respiration of Cytherissa lacustris (Ostracoda) at different temperature and oxygen concentration // Oecologia. 1985. V. 67. No 2. P. 250–254.

984. Nezbrytska I., Usenko O., Konovets I., Leontieva T., Abramiuk I., Goncharova M., Bilous O. Potential Use of Aquatic Vascular Plants to Control Cyanobacterial Blooms: A Review // Water. 2022. V. 14(11). P. 1727. DOI:https://doi.org/10.3390/w14111727

985. Nixon S., Bewes V., Mills D. Study of Pressures and Measures in the Major River Basin Management Plans: Comparison of Typologies. Project Report. WRc. 2012. https://ec.europa.eu/environment/archives/water/implrep2007/pdf/Governance-Pressures%20and%20measures.pdf

986. Noble R.T., Fuhrman J.A. Use of SYBR Green I for rapid epifluorescence counts of marine vi-ruses and bacteria // Aquat. Microb. Ecol. 1998. V. 14. P. 113–118.

987. Norland S. The relationship between biomass and volume of bacteria // Handbook of Methods in Aquatic Microbial Ecology, Chapter 35 / Kemp P.F., Sherr B.F., Sherr E.B., Cole J.J. (eds.). L.: Lewis Publishers, 1993. P. 303–308.

988. Nougué O., Gallet R., Chevin L.M., Lenormand T. Niche limits of symbiotic gut microbiota constrain the salinity tolerance of brine shrimp // The American Naturalist. 2015. V. 186. No 3. P. 390–403.

989. Obertegge U., Smith H.A., Flaim G., Wallace R.L. Using the guild ratioto characterize pelagic rotifer communities // Hydrobiologia. 2011. V. 662. P. 157–162. DOI:https://doi.org/10.1007/s10750-010-0491-5

990. O’Connor N.A. The effects of habitat complexity on the macroinvertebrates colonising wood substrates in a lowland stream // Oecologia. 1991. V. 85. No 4. P. 504–512.

991. OECD. Eutrophication of waters. Monitoring, assessment and control. Paris, 1982. 155 p.

992. Öquist G., Hagström A., Alm P. et al. Chlorophyll a fluorescence, an alternative method for estimating primary production // Mar. Biol. 1982. V. 68. No 1. P. 71–75.

993. Okafor N. Environmental Microbiology of Aquatic and Waste Systems. Dordrecht, Heidelberg, London, New York: Springer, 2011. 307 p.

994. Olenina I., Hajdu S., Edler L., Andersson A., Wasmund N., Busch S., Göbel J., Gromisz S., Huseby S., Huttunen M., Jaanus A., Kokkonen P., Ledaine I., Niemkiewicz E. Biovolumes and size-classes of phytoplankton in the Baltic Sea // HELCOM Balt. Sea Environ. Proc. 2006. No. 106. 144 p.

995. Olson R.J., Sosik H.M. A submersible imaging-in-flow instrument to analyze nano- and microplankton: Imaging FlowCytobot // Limnology and Oceanography: Methods. 2007. V. 5. Is. 6. P. 156–216.

996. Pang K-L, Overy D.P, Jones E.B.G., Calado M.DaL., Burgaud G., Walker A.K., Johnson J.A., Kerr R.G., Cha H.-J., Bills G.F. “Marine fungi” and “marine-derived fungi” in natural product chemistry research: Toward a new consensual definition // Fungal Biology Reviews. 2016. V. 30(4). P. 163–175. DOI:https://doi.org/10.1016/j.fbr.2016.08.001

997. Pantle E., Buck H. Die Biologische Uberwachung der Gewässer und Die Darstellung der Ergebnisse, Gas- und Wasserfach. 1955. Vol. 96. No 18. 604 р.

998. Parker S. Aquatic Observation System (AOS). Protocol and procedure: periphyton and phytoplankton sampling // National Ecological Observatory Network (NEON). 2018. 79 p.

999. Parsons T.R., Strickland J.D.H. Discussion on spectrophotometric determination of marine-plant pigments with revised equations for ascertaining chlorophylls and carotenoids // J. Mar. Res. 1963. V. 21. No 3. P. 155–168.

1000. Patalas K. Crustacean plankton and the eutrophication of St. Lawrence Great Lakes // J. Fish. Res. Board Canada. 1972. V. 29. No 10. P. 1451–1462.

1001. Patalas J., Patalas K. The crustacean plankton communities in Polish Lakes // Verh. Int. Ver. Limnol. 1966. V. 16. P. 204–215.

1002. Peerakietkhajorn S., Kato Y., Kasalický V., Matsuura T., Watanabe H. Betaproteobacteria Limnohabitans strains increase fecundity in the crustacean Daphnia magna: symbiotic relationship between major bacterioplankton and zooplankton in freshwater ecosystem // Environmental microbiology. 2016. V. 18. No 8. P. 2366–2374.

1003. Pelletier M.C. Benthic Ecology / Kennish M.J. (eds). Encyclopedia of Estuaries. Encyclopedia of Earth Sciences Series. Springer, Dordrecht, 2016. DOI:https://doi.org/10.1007/978-94-017-8801-4_89

1004. Peters J.C., Ball R.C., Kevem N.R. An evaluation of artificial substratesf or measuring periphyton production: Michigan State Univershy Technical Report 1, Red Cedar River Series. 1968. 70 p.

1005. Petrov A., Nevrova E., Terletskaya A., Milyukin M., Demchenko V. Structure and taxonomic diversity of benthic diatoms assemblage in a polluted marine environment (Balaklava bay, Black Sea) // Polish Bot. J. 2010. V. 55(1). P. 183–197.

1006. Periphyton of Freshwater Ecosystems // Proceedings of the First International Workshop on Periphyton of Freshwater Ecosystems held in Växjö, Sweden, 14–17 September. 1982. 346 p.

1007. Pietryczuk A., Cudowski A., Hauschild T., Swisłocka M., Więcko A., Karpowicz M. Abundance and species diversity of fungi in rivers with various contaminations // Current Microbiology: Springer. 2017. DOI:https://doi.org/10.1007/s00284-017-1427-3

1008. Pimm S.L., Lawton J.H., Cohen J.E. Food web patterns and their consequences (a review) // Nature. 1991. V. 350. Р. 669–674.

1009. Picelli S., Faridani O., Björklund Å. et al. () Full-length RNA-seq from single cells using Smart-seq2. Nat Protoc 2014. V. 9. P. 171–181. DOI:https://doi.org/10.1038/nprot.2014.006

1010. Porter K.G., Feig Y.S. The use of DAPI for identifying and counting of aquatic microflora // Limnol. Oceanogr. 1980. V. 25. No 5. P. 943–948. DOI:https://doi.org/10.4319/LO.1980.25.5.0943

1011. Pratt J.R., Rosen B.H. Associations of Species of Vorticella (Peritrichida) and Planktonic Algae // Transactions of the American Microscopical Society. 1983. V. 102(1). P. 48. DOI:https://doi.org/10.2307/3225924

1012. Prejs K., Stanczykowska A. Spatial differentiation and changes in time of zoomicrobenthos in three Masurian lakes // Ecol. Pol. 1972. V. 20. No 45. P. 733–745.

1013. Principles and Standards for Measuring Primary Production / Fahey T.J., Knapp A.K. (Eds.). Oxford: University Press, 2007. 281 p.

1014. Props R., Monsieurs P., Mysara M. et al. Measuring the biodiversity of microbial communities by flow cytometry // Methods Ecol. EV. 2016. V. 7. P. 1376–1385.

1015. Protasow A.A., Afanasyew S.A. Das Periphyton der Donau und die Bewertung der Gewassergut // Ergebnisse der Donauexpedition. 1989. P. 195–197.

1016. Quast C., Pruesse E., Yilmaz P. et al. The SILVA ribosomal RNA gene database project: improved data processing and web-based tools. Opens external link in new windowNucl // Acids Res. 2013. 41 (D1): D590–D596.

1017. Quinn J.P. Seasonal occurrence of yeаsts and other fungi in a freshwater lake // Trans. Brit. mycol. Soc. 1984. V. 83. No 1. P. 53–58.

1018. R Core Team. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria. 2012. URL: http://www.R-project.org/

1019. Rabeni C.F., Jakobson R.B. The importance of fluvial hydraulics to fish-habitat restoration in low-gradient alluvial streams // Freshwater Biol. 1993. V. 29. P. 211–220.

1020. Rader R.B. A functional classification of the drift: traits that influence invertebrate availability to salmonids // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1997. V. 54. P. 1211–1234.

1021. Rader R.B., Ward J.V. Diel migration and microhabitat distribution of a benthic stream assemlage // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1990. V. 47. No 4. P. 711–718.

1022. Ram´ırez A., Pringle C.M. Invertebrate drift and benthic community dynamics in a lowland neotropical stream, Costa Rica // Hydrobiologia. 1998. V. 386. P. 19–26.

1023. Rao C.R. Diversity and dissimilarity coefficients: a unified approach // Theoretical Population Biology. 1982. V. 21(1). P. 24. DOI:https://doi.org/10.1016/0040-5809(82)90004-1

1024. Raven J.A., Beardall J. Chlorophyll fluorescence and ecophysiology: seeing red? // New Phytol. 2006. V. 169. P. 449–451.

1025. Raymond L., Kepner J.R., Pratt J.R. Use of fluorochromes for direct enumeration of total bacteria in environmental samples: past and present // Microbiol. Rev. 1994. V. 58. No 4. P. 603–615.

1026. Regaudie-de-Gioux A., Lasternas S., Agustí S., Duarte C.M. Comparing marine primary production estimates through different methods and development of conversion equations // Front. Mar. Sci. 2014. V. 1. Art. 19. DOI:https://doi.org/10.3389/fmars.2014.00019

1027. Renaud-Debyser J. Recherches Ecologiques sur la fauna interstitielle des sables (Bassin d’Arcachon, Ile de Bimini, Bahamas) // Vie et Milieu. 1963. Supplement, 15. 157 p.

1028. Reynolds C.S. The Ecology of Phytoplankton. Cambridge: CUP, 2006. 546 p.

1029. Richards E.A., Thompson T.G. The estimation and characterization of plankton population by pigment analyses. II. A spectrophotometric method for the estimation of plankton pigments // J. Marine Res. 1952. V. 11. No 2. P. 156–172.

1030. Robeson M.S., O'Rourke D.R., Kaehler B.D. et al. RESCRIPt: Reproducible sequence taxonomy reference database management // PLOS Computatiomal Biology. 2021. 17. DOI:https://doi.org/10.1371/journal.pcbi.1009581

1031. Robinson C. Heterotrophic bacterial respiration // Ed. Kirchman D.L. Microbial Ecology of the Oceans. 2nd edn. New York: John Wiley & Sons Inc., 2008. P. 299–334.

1032. Robinson C.T., Tockner K., Burgherr P. Drift benthos relationships in the seasonal colonization dynamics of alpine streams // Archiv für Hydrobiologie. 2004. V. 160. No 4. P. 447–470. DOI:https://doi.org/10.1127/0003-9136/2004/0160-0447

1033. Rocha O., Duncan A. The relationship between cell carbon and cell volume in freshwater algal species used in zooplanktonic studies // J. Planton Res. 1985. V. 7. Р. 279–294.

1034. Rojo C., Segura M., Rodrigo M.A. The allelopathic capacity of submerged macrophytes shapes the microalgal assemblages from a recently restored coastal wetland // Ecol. Eng. 2013. V. 58. P. 149–155. DOI:https://doi.org/10.1016/j.ecoleng.2013.06.019

1035. Round F.E. The ecology of algae. Cambridge University Press. NY, London, 1981. 650 p.

1036. Roy A.H., Rosemond A.D., Paul M.J., Leigh D.S., Wallace J.B. Stream macroinvertebrate response to catchment urbanisation (Georgia, U.S.A.) // Freshwater Biology. 2003. V. 48. P. 329–346.

1037. Ruttner F. Fundamentals of limnology. Toronto: University of Toronto Press, 1963. 295 p.

1038. Saltveit S.J., Haug I., Brittain J.E. Invertebrate drift in a glacial river and its non-glacial tributary // Freshwater Biol. 2001. V. 46. P. 1777–1789.

1039. Sampling Sea and Ocean. Hydro-bios. Apparatebau GmbH. Электронный ресурс. URL: http://www.hydrobios.de (обращение 20 июня 2023 г.)

1040. Saether O.A. Nearctic chironomids as indicators of lake typology // Verh. Internat. Verein. Limnol. 1975. V. 19. P. 3127–3133.

1041. Saether O.A. Chironomid communities as water quality indicators // Holarctic Ecology. 1979. No 2. P. 65–74.

1042. Sanger J.E., Gorham E. Stratigraphy of fossil pigments as a guide to the postglacial history of Kirchner Marsh, Minnesota // Limnol. Oceanogr. 1972. V. 17. No 6. P. 840–854.

1043. Santangelo J.M., Araújo L.R., Esteves F.D.A., Manca M., Bozelli R.L. Method for hatching resting eggs from tropical zooplankton: effects of drying or exposing to low temperatures before incubation // Acta Limnologica Brasiliensia. 2011. V. 23. P. 42–47.

1044. Santos J.L., Nick F., Adhitama N., Kato Y., Watanabe H., Ebert D. Trehalose mediates salinity-stress tolerance in natural populations of a freshwater crustacean // Current Biology. 2024. V. 34. Is. 18. P. 4160–4169.

1045. Sarkka J., Kurashov E. Meiofauna in the profundal zone of the northern part of Lake Ladoga // Intercalibration of research methods in Lake Ladoga. University of Joensuu. Karelian Institute. Working Papers. 1992. No 8. P. 35–40.

1046. Sarkka J., Paasivirta L. Vertical distribution and abundance of the macro- and meiofauna in the profundal sediments of Lake Paijane, Finland // Ann. Zool. Fenn. 1972. V. 9. No 1. P. 1–9.

1047. Schallenberg M., Kalff J., Rasmussen J.B. Solutions to problems in enumerating sediment bacteria by direct counts // Appl. Environ. Microbiol. 1989. V. 55. No 5. P. 1214–1219.

1048. Schauff M.E. (Ed.). Collecting and preserving insects and mites: techniques and tools. Washington: Systematic entomology laboratory, USDA. 1986. URL: http://lsuinsects.org/resources/docs/publications/Shauf1986SELcollectingmanual.pdf

1049. Schindler D.W. Detecting ecosystem responses to anthropogenic stress // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1987. V. 44 (Suppl. 1). P. 6–25.

1050. Schindler D.W. Effects of acid rain on freshwater ecosystems // Science. 1988. V. 239. P. 149–157.

1051. Schindler D.W., Frost V.E., Mills K.H. et al. Comparison between experimentally– and atmosphaerically–acidified lakes during stress and recovery // Proc. Royal Soc. Edinburg. 1991. V. 97. P. 193–226.

1052. Schleuter D., Daufresne M., Massol F., Argillier C. A user’s guide to functional diversity indices // Ecological Monographs. 2010. Vol. 80(3). P. 469–484.

1053. Schmid P.E., Schmid-Araya J.M., Tokeshi M. The scaling of biomass variance across trophic levels in stream species communities: a macroecological approach // Hydrobiologia. 2020. V. 847. P. 2705–2723. DOI:https://doi.org/10.1007/s10750-020-04239-5

1054. Schmid-Araya J.M., Schmid P.E., Majdi N., Traunspurger W. Biomass and production of freshwater meiofauna: a review and a new allometric model // Hydrobiologia. 2020. DOI:https://doi.org/10.1007/s10750-020-04261-7

1055. Schülting L., Feld C., Zeiringer B., Hudek H., Wolfram G. Macroinvertebrate drift response to hydropeaking: An experimental approach to assess the effect of varying ramping velocities // Ecohydrology. 2018. V. 12. Is. 1. P. 1–12. DOI:https://doi.org/10.1002/eco.2032

1056. Schwartz S.S., Hebert P.D.N. Methods for the activation of the resting eggs of Daphnia // Freshwater Biology. 1987. V. 17. No 2. P. 373–379.

1057. SCOR-UNESCO Working Group №17. Determination of photosynthetic pigments in sea water // Monographs on Oceanographic Methodology. Montreux: UNESCO, 1966. P. 9–18.

1058. Sharapova T.A., Gerasimov A.G., Gerasimova A.A. Invasive tropical crustacean Stenocypris sp. (Ostracoda) in periphyton of a cooling Pond (the Western Siberia) // Hydrobiological Journal. 2020. V. 56(3). P. 62–68.

1059. Shao J.H., Wu Z.X., Yu G.L., Peng X., Li R.H. Allelopathic mechanism of pyrogallol to Microcystis aeruginosa PCC7806 (Cyanobacteria): from views of gene expression and antioxidant system // Chemosphere. 2009. V. 75. P. 924–928.

1060. Shibata A., Goto Y., Saito H. et al. Comparison of SYBR Green I and SYBR Gold stains for enumerating bacteria and viruses by epifluorescence microscopy // Aquat. Microb. Ecol. 2006. V. 43. No 3. P. 223–231.

1061. Shtangeeva I., Perämäki P., Niemelä M., Kurashov E., Krylova Yu. Potential of wheat (Triticum aestivum L.) and pea (Pisum sativum) for remediation of soils contaminated with bromides and PAHs // International Journal of Phytoremediation. 2018. V. 20 (6). P. 560–566. DOI:https://doi.org/10.1080/15226514.2017.1405375

1062. Shtangeeva I., Niemelä M., Perämäki P., Kurashov E., Krylova Yu. Effects of Potassium and Sodium Bromides on Triticum aestivum and Pisum sativum // Russian Journal of Plant Physiology. 2022. V. 69: 36. DOI:https://doi.org/10.1134/S1021443722020182

1063. Seepersad B., Crippen R.W. Use of aniline blue for distinguishing between live and dead freshwater zooplankton // J. Fish. Res. Board Canada. 1978. V. 35. No 10. P. 1363–1366.

1064. Shah M.M. A new species of Chitwoodiella Basir, 1948 with first report on Mirzaiella asiatica Basir, 1942 (Nematoda, Travassosinematidae) from Manipur, North-East India // Acta Parasitologica. 2008. V. 53(2). P. 145–152. DOI:https://doi.org/10.2478/s11686-008-0030-y

1065. Sieburth J.M., Smetacek V., Lenz J. Pelagic ecosystem structure: Heterotrophic compartments of the plankton and their relationship to plankton size fractions // Limnology and Oceanography. 1978. V. 23(6). P. 1256–1263.

1066. Siegfried C.A., Bloomfield J.A., Sutherland J.W. Planktonic rotifer community structure in Adirondak, New York, U.S.A. lakes in relation to acidity, trophic status and related water quality characteristics // Hydrobiologia. 1989. V. 175. No 1. P. 33–49.

1067. Šimek K., Macek M., Pernthalter J., Straskrabova V., Psenner R. Can freshwater planktonic ciliates survive on a diet of picoplankton? // J. Plankton Res. 1996. V. 18. P. 597–613.

1068. Simon M., Jardillier L., Deschamps P. et al. Complex communities of small protists and unexpected occurrence of typical marine lineages in shallow freshwater systems // Environ. Microbiol. 2015. V. 17. P. 3610–3627. DOI:https://doi.org/10.1111/1462-2920.12591

1069. Sison-Mangus M.P., Mushegian A.A., Ebert D. Water fleas require microbiota for survival, growth and reproduction // The ISME journal. 2015. V. 9. No 1. P. 59–67.

1070. Skilbeck С.G., Trevathan-Tackett S., Apichanangkool P., Macreadie P.I. Sediment Sampling in Estuaries: Site Selection and Sampling Techniques // Applications of Paleoenvironmental Techniques in Estuarine Studies, Developments in Paleoenvironmental Research / Weckström K., Saunders K.M., Gell P.A., Skilbeck C.G. (eds.). Springer Science+Business Media B.V., 2017. P. 89–120. DOI:https://doi.org/10.1007/978-94-024-0990-1_5

1071. Skvortsov V.V. Meiobenthos communities of some subarctic lakes // Hydrobiologia. 1997. V. 342. P. 117–124. DOI:https://doi.org/10.1023/A:1017021428512

1072. Slack K.V. A study of the factors affecting stream productivity by the comparative method // Invest. Indiana Lakes Streams. 1955. V. 4. P. 3–47.

1073. Slack K.V., Averett R.C., Greeson P.E., Lipscomb R.G. Methods for collection and analysis of aquatic biological and microbiological samples // Techniques of Water-resources Investigations of the United States Geological Survey. Book 5 US Department of the Interior, Geological Survey: Washington, DC, 1973. Ch. 4A. P. 1–65.

1074. Sladeček V. System of water quality from the biological point of view // Arch. Hydrobiol. 1973. Bd. 7. 218 s.

1075. Śliwińska-Wilczewska S., Wiśniewska K.A., Budzałek G., Konarzewska Z. Phenomenon of Allelopathy in Cyanobacteria // Ecophysiology and Biochemistry of Cyanobacteria / Rastogi R.P. (ed). Springer, Singapore, 2021. P. 225–254. DOI:https://doi.org/10.1007/978-981-16-4873-1_11

1076. Ślusarczyk M., Chlebicki W., Pijanowska J., Radzikowski J. The role of the refractory period in diapause length determination in a freshwater crustacean // Scientific Reports. 2019. V. 9. No 1. P. 11905.

1077. Sokal R.R., Rohlf F.J. Biometry: The Principles and Practice of Statistics in Biological Research. 3rd Edition. W.H. Freeman and Co. New York. 1995. 887 p.

1078. Somerfield P.J., Warwick R.M. Meiofauna Techniques // Methods for the Study of Marine Benthos. Fourth Edition. Ed. Anastasios Eleftheriou. John Wiley & Sons Ltd. Published, 2013. P. 253–284.

1079. Sorensen T.A. A method of establishing groups of equal amplitude in plant sociology based on similarity of species content, and its application to analyses of the vegetation on Danish com–mons // Kongelige Danske Videnskabernes Selskabs Biologiske Skrifter, 1948. V. 5. P. 1–34.

1080. Sorokin Y.I. Radioisotopic Methods in Hydrobiology. Springer-Verlag: Berlin, Heidelberg, 1999. 321 p.

1081. Sosik H.M., Olson R.J. Automated taxonomic classification of phytoplankton sampled with imageing flow cytometry // Limnology and Oceanography: Methods. 2007. V. 5. Is. 6. P. 156–216.

1082. Sparrow F.K. Aquatic Phycomycetes. Ann Arbor: Univ. of Michigan Press, 1960. 1188 p.

1083. Spellman F.R., Drinan J. Stream Ecology and Self Purification: An Introduction, Second Edition (2nd ed.). CRC Press, 2001. DOI:https://doi.org/10.1201/9781420031676

1084. Špoljar M., Habdija I., Primc-Habdija B., Sipos L. Impact of environmental variables and food availability on rotifer assemblage in the karstic barrage lake Visovac (Krka River, Croatia) // Int. Rev. Hydrobiol. 2005. V. 90. P. 555–579. DOI:https://doi.org/10.1002/iroh.200510791

1085. Sprules W.G., Holtby L.B. Body size and feeding ecology as alternatives to taxonomy for the study of limnetic zooplankton community structure // J. Fish Res. Board Can. 1979. V. 36. P. 1354–1363. DOI:https://doi.org/10.1139/f79-194

1086. Spyres G., Nimmo M., Worsfold P.J. et al. Determination of dissolved organic carbon in seawater using high temperature catalytic oxidation techniques // TrAC (Trends in Analytical Chemistry). 2000. V. 19. No 8. Р. 498–506.

1087. Stanczykowska A. Some methodical problems in zoomicrobenthos studies // Ekol. Pol. ser. A. 1966. V. 14. No 23. P. 385–393.

1088. Stay F.S., Flum T.E., Shannon L.J., Yount J.D. An assessment of the precision and accuracy of SAM and MFS microcosms exposed to toxicants // Aquatic Toxicology and Hazard Assessment. Philadelphia. 1989. V. 12. P. 189203.

1089. Steemann Nielsen E. The use of radio-active carbon (14C) for measuring organic production in the sea // J. Cons. Perm. Int. Explor. Mer. 1952. V. 18. P. 117–140. DOI:https://doi.org/10.1093/icesjms/18.2.117

1090. Steward G.F., Fandino L.B., Hollibaugh J.T. et al. Microbial biomass and viral infections of heterotrophic prokaryotes in the sub-surface layer of the Central Arctic // Deep Sea Research Part I Oceanographic Research Papers. 2007. V. 54. No 10. P. 1744–1757. DOI:https://doi.org/10.1016/j.dsr.2007.04.019

1091. Stibor H., Hairston N.Jr., Santer B., Sommer U., Spaak P., Weider L.J. Winfried Lampert – International Visionary for the Aquatic Sciences // Limnology and Oceanography Bulletin. 2021. V. 30. No 3. P. 107–113.

1092. Stoffels R.J., Karbe S., Paterson R.A. Length-mass models for some common New Zealand littoral-benthic macroinvertebrates, with a note on within-taxon variability in parameter values among published models // New Zealand J. Mar. and Freshw. Res. 2003. V. 37. P. 449–460. DOI:https://doi.org/10.1080/00288330.2003.9517179

1093. Strayer D. Benthic Invertebrate Fauna, Lakes and Reservoirs // Encyclopedia of Inland Waters. 2009. DOI:https://doi.org/10.1016/B978-012370626-3.00161-7

1094. Strategies for Preventing and Managing Harmful Cyanobacterial Blooms. Interstate Technology & Regulatory Council, 2021. Report number: 1st edition. 259 p. (Электронный документ) // (https://www.researchgate.net/publication/350819844_Strategies_for_Preventing_and_Managing_Harmful_Cyanobacterial_Blooms_TechnicalRegulatory_Guidance) Проверено 12.05.2024.

1095. Suberkropp K. Aquatic hyphomycete communities // The Fungal Community: its organization and role in the ecosystem. New York: Marcel Dekker, 1992. P. 729–747.

1096. Suberkropp K., Klug M.J. Fungi and bacteria associated with leaves during processing in a woodland stream // Ecology. 1976. V. 57. No 4. P. 707–719.

1097. Surber E.W. Rainbow trout and bottom fauna production in one mile of stream // Trans. am. Fish. Soc. 1937. V. 66. P. 193–202.

1098. Sun J., Liu D. Geometric models for calculating cell biovolume and surface area for phytoplankton // Journal of Plankton Research. 2003. V. 25. No 11. P.1331–1346. DOI:https://doi.org/10.1093/plankt/fbg096

1099. Swain E.B. Measurement and interpretation of sedimentary pigments // Freshwater Biol. 1985. V. 15. No 1. P. 53–75.

1100. Tang K.W., Gladyshev M.I., Dubovskaya O.P., Kirillin G., Grossart H. Zooplankton carcasses and non-predatory mortality in freshwater and inland sea environments // J. Plankton Res. 2014. V. 36. No 3. P. 597–612.

1101. Taub F.B. Measurement of pollution in standartized aquatic microcosms // Concepts in marine pollution measurements / White H.H. (Ed.). University of Maryland, 1984. P. 148–158.

1102. Taub F.B. Standartized aquqtic microcosms // Environ. Sci. Technol. 1989. V. 23. No 9. P. 1064–1066.

1103. Techniques of Water-Resources Investigations of the United States Geological Survey Chapter A4. Methods for collection and analysis of aquatic biological and microbiological samples / Eds. by Britton L.J. and Greeson P.E. Revised, 1977. P. 127–150.

1104. Telesh I. V., Ooms-Wilms A. L., Gulati R. D. Use of fluorescently labeled algae to measure the clearance rate of the rotifer Keratella cochlearis // Freshwater Biol. 1995. V. 33. No 3. P. 349–355.

1105. Telford J.V., Kay M.L., Vander Heide H., Wiklund J.A, Owca T.J., Faber J.A., Wolfe B.B., Hall R.I. Building upon open-barrel corer and sectioning systems to foster the continuing legacy of John Glew // J. Paleolimnol. 2021. V. 65. P. 271–277. DOI:https://doi.org/10.1007/s10933-020-00162-w

1106. Thomas K. Freshwater fungi. In: Grgurinovic C, ed.Introductory Volume to the Fungi. Part 2 C. Fungi of Australia Vol IB. Canberra: ABRS, 1996. P. 1–37.

1107. Thomas M.R., Shattock R.C. Filamentous fungal association in the phylloplane of Lolium perrene // Trans. Brit. mycol. Soc. 1986. V. 87. Pt. 2. P. 255–268.

1108. Thomas W.H., Dodson A.N. Concentrating plankton in a gentle fashion // Limnology and Oceanography. 1964. V. 9. No 3. P. 455–456.

1109. Thorp J.H., Covich A.P. Ecology and classification of North American freshwater invertebrates. 2nd ed. London, Academic Press, 2001. 1056 с.

1110. Threlkeld S.T. Spatial and temporal variation in the summer zooplankton community of a riverine reservoir // Hydrobiologia. 1983. V. 107. Р. 249–254. DOI:https://doi.org/10.1007/BF00036694

1111. Tierno de Figueroa J.M., López-Rodríguez M.J. Trophic ecology of Plecoptera (Insecta): a review // The European Zoological Journal. 2019. V. 86. No. 1. P. 79–102. DOI:https://doi.org/10.1080/24750263.2019.1592251

1112. Tietjen J.H. The Ecology of Shallow Water Meiofauna in Two New England Estuaries // Oecologia. 1969. V. 2. No 3. P. 251–291. DOI:https://doi.org/10.2307/4214517

1113. Toepel J., Wilhelm C., Meister A., Becker A., Martinez-Ballesta M. del C. Cytometry of freshwater phytoplankton // Methods in Cell Biology. 2004. V. 75. P. 375–407.

1114. Timm T. A guide to the freshwater oligochaeta and polychaeta of Northern and Central Europe. V. 66. Dinkelscherben: Lauterbornia, 2009. 234 p.

1115. Tolomeyev A.P., Zadereev Ye.S. An in situ method for the investigation of vertical distributions of zooplankton in lakes: test of a two-compartment enclosure // Ibid. 2005. V. 39. No 2. P. 181–188.

1116. Torben M.I. Secondary production and trophic relationships in a spring invertebrate community // Limnology and Oceanography. 1988. V. 33. Is. 4. P. 582–592.

1117. Traunspurger W., Majdi N. Meiofauna // Methods in Stream Ecology. 2017. V. 1. P. 273–295. DOIhttps://doi.org/10.1016/b978-0-12-416558-8.00014-7

1118. Tse T.J., DOIg L.E., Leavitt P.R., Quiñones-Rivera Z.J., Codling G., Lucas B.T., Liber K., Giesy J.P., Wheater H., Jones P.D. Long-term spatial trends in sedimentary algal pigments in a narrow river-valley reservoir, Lake Diefenbaker, Canada // J. Great Lakes Res. 2015. V. 41. Supplement 2. P. 56–66.

1119. Tubaki R. Marine fungi from Japan // Lignicolous. J. Trans. Mycol. Soc. Japanese. 1966. V. 7. P. 73–87.

1120. Turić N., Temunović M., Vignjević G., Antunović-Dunić J., Medrić E. A comparison of methods for sampling aquatic insects (Heteroptera and Coleoptera) of different body sizes, in different habitats using different baits // European Journal of Entomology. 2017. V. 114. P. 123–132. DOI:https://doi.org/10.14411/eje.2017.017

1121. Turley C.M., Newell R.C., Robins D.B. Survival strategies of two small marine ciliates and their role in regulating bacterial community structure under experimental conditions // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1986. V. 33. P. 59–70.

1122. Ugland K.I., Gray J.S. Estimation of species richness: analysis of the methods developed by Chao and Karakassis // Mar. Ecol. Progr. Ser. 2004. V. 284. Р. 1–8.

1123. Uhlig G., Thiel H., Crag J. The quantitative separation of meiofauna. A comparison of methods // Helgoland. Wiss. Meeresuntersuch. 1973. V. 25. No 1. P. 173–195.

1124. Ulfstrand S. Benthic animal communities in Lapland streams // Oikos. 1968. No 10. P. 1–120.

1125. Use of algae for monitoring rivers I. / Ed. by Whitton B., Rott E., Friedrich G. Innsbruck. Austria, 1991. 190 p.

1126. Utermöhl H. Zur Vervollkommnung der quantitativen Phytoplankton-methodik // Internationale Vereinigung fȕr Theoretische und Angewandte Limnologie: Mitteilungen. 1958. V. 9. Is. 1. 39 p.

1127. Van Damme K., Dumont H.J. Cladocera of the Lençóis Maranhenses (NE-Brazil): faunal composition and a reappraisal of Sars' Method // Brazilian Journal of Biology. 2010. V. 70. P. 755–779.

1128. Vandegehuchte M.B., Lemière F., Vanhaecke L., Berghe W.V., Janssen C.R. Direct and transgenerational impact on Daphnia magna of chemicals with a known effect on DNA methylation // Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology. 2010. V. 151. No 3. P. 278–285.

1129. Vandegehuchte M.B., Janssen C.R. Epigenetics in an ecotoxicological context // Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis. 2014. V. 764. P. 36–45.

1130. Vandekerkhove J., Declerck S., Brendonck L., Conde-porcuna J.M., Jeppesen E., De Meester L. Hatching of cladoceran resting eggs: temperature and photoperiod // Freshwater Biology. 2005. V. 50. No 1. P. 96–104.

1131. Vaulot D., Courties C., Partensky F. A simple method to preserve oceanic phytoplankton for flow cytometric analyses // Cytometry. 1989. V. 10(5). P. 629–635.

1132. Velez P., Salcedo D.L., Espinosa-Asuar L., Gasca-Pineda J., Hernandez-Monroy A., Soto L.A. Fungal Diversity in Sediments From Deep-Sea Extreme Ecosystems: Insights Into Lowand High-Temperature Hydrothermal Vents, and an Oxygen Minimum Zone in the Southern Gulf of California, Mexico. Front. Mar. Sci. 2022. 9:802634. DOI:https://doi.org/10.3389/fmars.2022.802634

1133. Vernet M., Smith R.C. Measuring and modeling primary production in marine pelagic ecosystems // Principles and Standards for Measuring Primary Production. Oxford: University Press, 2007. P. 142–174.

1134. Violle C., Navas M.L., Vile D., Kazakou E., Fortunel C., Hummel I., Garnier E. Let the concept of trait be functional! // Oikos. 2007. V. 116. P. 882–892. DOI:https://doi.org/10.1111/j.2007.0030-1299.15559.x

1135. Vogt G. Epigenetics in Crustaceans // Epigenetics in Aquaculture. 2023. P. 355–381.

1136. Vogt G., Huber M., Thiemann M., van den Boogaart G., Schmitz O.J., Schubart C.D. Production of different phenotypes from the same genotype in the same environment by developmental variation // Journal of Experimental Biology. 2008. V. 211. No 4. P. 510–523.

1137. Volk R. Die bei der Hamburgischen Elb-Untersuchung angewandten Methoden zur quantitativen Ermittelung des Planktons // Mitt. Naturhist. Mus. Hamburg. 1901. Bd. 18. S. 135–182.

1138. Vollenweider R.A. Das Nahrstoffbelastungsconzept als Grundlage fur den eutrophierungs-prozess stehender Gewasser und Talsperren // Zeitschrift fur Wasser und Abwasser Forschung. 1979. No 2. Bd. 12. S. 46–56.

1139. Vollenweider R.A., Giovanardi F., Montanari G., Rinaldi A. Characterization of the trophic conditions of marine coastal waters, with special reference to the NW Adriatic Sea: proposal for a trophic scale, turbidity and generalized water quality index // Environmetrics. 1998. V. 9. P. 329–357.

1140. Voronin L.V. Terrigenous micromycetes in freshwater ecosystems (Rewiew) // Inland Water Biology. 2014. V. 7. No 4. P. 352–356. DOI:https://doi.org/10.1134/S1995082914040191

1141. Voronin L.V., Kopytina N.I. Mycobiota of Dead Reed Fragments Immersed in Water (Yaroslavl Oblast, Russia) // Inland Water Biology. 2023. V. 16. No 1. P. 40–47. DOI:https://doi.org/10.1134/S1995082923010169

1142. Warwick R.M., Clarke K.R. Taxonomic distinctness and environmental assessment // J. Appl. Ecol. 1998. V. 35(4). Р. 532–543.

1143. Warwick R.M., Clarke K.R. Practical measures of marine biodiversity based on relatedness of species // Oceanogr. and Mar. Biol. (Annual Rev.). 2001. V. 39. P. 201–231.

1144. Waters T.F. Diurnal periodicity in the drift of stream invertebrates // Ecology. 1962. V. 43. P. 316–320.

1145. Waters T.F. The drift of stream insects // Annual Review of Entomology. 1972. V. 17. P. 253–272.

1146. Waters T.F., Hokenström J.C. Annual production and drift of the stream amphipod Gammarus pseudolimnaeus in Valley Creek, Minnesota // Limnol. Oceanogr. 1980. V. 25(4). P. 700–710.

1147. Watson R.A., Osborne P.L. An algal pigment ratio as an indicator of the nitrogen supply to phytoplankton in three Norfolk broads // Freshwater Biol. 1979. V. 3. No 6. P. 585–594.

1148. Weisse T. Dynamics of autotrophic picoplankton in marine and freshwater ecosystems // Adv. Microb. Ecol. 1993. V. 13. P. 327–370.

1149. Wehr J.D., Sheath R.G. Freshwater habitats of algae // Freshwater Algae of North America / Wehr J.D., Sheath R.G., Kociolek J.P. (eds.). Edition: 2nd. San Diego: Academic Press, 2015. P. 11–57.

1150. Wen K., Ortmann A.C., Suttle C.A. Accurate estimation of viral abundance by epifluorescence microscopy // Appl. Environ. Microbiol. 2004. V. 70. P. 3862–3867.

1151. Wetland Techniques. Volume 2: Organisms / Anderson J.T., Davis C.A. (еds.). Springer, Dordrecht, Heidelberg, New York, London, 2013. 332 p.

1152. Wetzel R.G. Limnology. Toronto: A.B. Saunders Co, 1983. 753 p.

1153. Wetzel R.G. Limnology. Lake and River Ecosystems. San Diego, San Francisco, New York, et al.: Academic Press, 2001. 1006 р.

1154. Whittaker R.H., Feeny P.P. Allelochemics: Chemical Interactions between Species // Science. 1971. V. 171. P. 757–770.

1155. Wilhelm S.W., Smith R.E.H. Bacterial carbon production in Lake Erie is influenced by viruses and solar radiation // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 2000. V. 57. P. 317–326.

1156. Willén E. A simplified method of phytoplankton counting // British Phycological Journal. 1976. V. 11. No 3. P. 265–278.

1157. Williams D.D., Williams N.E. A counterstaining technique for use in sorting benthic samples // Limnol. and Oceanogr. 1974. V. 19. No 1. P. 152–154.

1158. Yarza P., Yilmaz P., Pruesse E. et al. Uniting the classification of cultured and uncultured bacteria and archaea using 16S rRNA gene sequences // Nat. Rev. Microbiol. 2014. V. 12. P. 635–645. DOI:https://doi.org/10.1038/nrmicro3330

1159. Yentsch C.S., Yentsch C.M. Fluorescent spectral signatures the characterization of phytoplankton populations by the use of excitation and emission spectra // J. Mar. Res. 1979. V. 37. P. 471–483.

1160. Yoon S.H., Ha S.M., Kwon S. et al. Introducing EzBioCloud: A taxonomically united database of 16S rRNA and whole genome assemblies // International Journal of Systematic Evolutionary Microbiology. 2017. V. 67. P. 1613–1617. DOI:https://doi.org/10.1099/ijsem.0.001755

1161. Zhai D., Wang Q., Jin C. Dormant and active ostracod communities in six rice fields of Yunnan, China // Aquatic Sciences. 2024. V. 86. No 3. P. 79.

1162. Zhang Y., Li S., Li H., Wang R., Zhang K.Q., Xu J. Fungi–Nematode Interactions: Diversity, Ecology, and Biocontrol Prospects in Agriculture // J. Fungi. 2020. V. 6. No 4. art. 206. DOI:https://doi.org/10.3390/jof6040206

1163. Zhao F., Yu H.X., Ma C.X., Sun X., Liu D., Shang L.D., Liu J.M., Li X.Y., Li S., Li X.C., Yu T.Y., Shabani I.E., Wang Y.Z., Su L.J., Zhang L.M., Mu Y.Y., Xiao L., Tian Z., Pan C., Sun B., Pan H.F., Shang G.Y.Q., Chai F.Y., Meng Y. Characteristics of zooplankton functional groups and their environmental factors in the Harbin Section of the Songhua River // China Appl. Ecol. Env. Res. 2020. V. 18(5). P. 7457–7471.

1164. Zhou J., Cieraad E., van Bodegom P.M. Global analysis of trait–trait relationships within and between species // New Phytologist. 2022. V. 233(4). P. 1643–1656. DOI:https://doi.org/10.1111/nph.17879

1165. Zuo S., Zhou S., Ye L., Ding Y., Jiang X. Antialgal effects of five individual allelochemicals and their mixtures in low level pollution conditions // Environ. Sci. Pollut. Res. 2016. V. 23. Р. 15703–15711. DOI:https://doi.org/10.1007/s11356-016-6770-6

1166. 2416-B45 Ballchek™ Core Sampler. [Электронный ресурс: https://wildco.com/wp-content/uploads/2017/04/2416-B45-Ballchek-Core-Sampler.pdf]