сотрудник с 01.01.2021 по 01.01.2024
УДК 547.379.3 Дисульфиды
УДК 591.3 Эмбриология животных. Онтогенез. Индивидуальное развитие
УДК 57.081 Общие принципы организации биологических экспериментов
Методом световой микроскопии исследовали клеточные показатели периферической крови Danio rerio, Hamilton, 1822, экспонированных в течение 30 сут в водных растворах различных концентраций диметилдисульфида (ДМДС). Показано, что значимое изменение исследуемых параметров наблюдали только при концентрации ДМДС 5 мг/л. Отмечен сдвиг лейкоцитарной формулы в сторону уменьшения лимфоцитов и возрастания долей гранулоцитов (в основном метамиелоцитов и палочкоядерных гранулоцитов). Доли других типов клеток не превышали 2–6%. Наблюдали статистически значимый сдвиг состава клеток красной крови в сторону уменьшения доли зрелых и повышения доли незрелых эритроцитов, разноразмерность эритроцитов, а также амитоз. Не отмечено различий в количестве микроядер между контрольными и экспериментальными группами рыб.
данио рерио Danio rerio, эритроциты, лейкоциты, периферическая кровь, диметилдисульфид
1. Белова Н.В., Псурцева Н.В. Серосодержащие ароматические соединения, токсины и фармакологически активные метаболиты макромицетов // Микология и фитопатология. 2021. T. 55, № 1. С. 3–10. DOI:https://doi.org/10.31857/S0026364821010049.
2. Головина Н.А., Стрелков Ю.А., Воронин В.Н., Головин П.П., Евдокимова В.Б., Юхименко Л.Н. Ихтиопатология. М.: Мир, 2007. 448 с.
3. Заботкина Е.А., Лапирова Т.Б. Влияние пестицидов на иммунофизиологическое состояние рыб // Успехи современной биологии. 2004. Т. 124, № 4. С. 354–361.
4. Заботкина Е.А., Лапирова Т.Б., Середняков В.Е., Нестерова Т.А. Экологическая пластичность гематологических показателей пресноводных костистых рыб // Труды Института биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН. 2015. № 72(75). С. 16–29.
5. Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб. М.: Лег. и пищ. пром-сть, 1983. 80 c.
6. Карпов А.Б., Жагфаров Ф.Г., Козлов А.М. Снижение коксоотложения в печах пиролиза с помощью ингибитора коксообразования // Нефтепереработка и нефтехимия. 2015. № 11. С. 21–25.
7. Мещакова Н.М., Бенеманский В.В. Оценка биологического действия диметилдисульфида с учетом специфических отдаленных эффектов // Бюллетень ВСНЦ СО РАМН. 2005. № 2(40). С. 209–212.
8. Павлушкина Д.А. Влияние диметилдисульфида на показатели периферическеой крови и клетки жаберного эпителия Dаnio rerio в эксперименте // Актуальные проблемы биомедицины. Материалы XXVII Всеросс. Конф. молодых ученых с международным участием. Санкт-Петербург, 2021. С. 247–248.
9. Соболева Н.А., Калаев В.Н., Нечаева М.С., Калаева Е.А. Определение минимального количества анализируемых буккальных эпителиоцитов на препарате при проведении микроядерного теста // Вестник ВГУ, Серия: Химия. Биология. Фармация. 2016. № 3. С. 80–84.
10. Anastassiadou M., Arena M., Auteri D., Barmaz S., Brancato A. et al. Conclusion on the peer review of the pesticide risk assessment of the active substance dimethyl disulfide // EFSA Journal. 2019. Vol. 17. № 11. 28 p. DOI:https://doi.org/10.2903/j.efsa.2019.5905.
11. Barnes I., Becker K.H. An FTIR Product Study of the Photooxidation of Dimethyl Disulfide // J. Atm. Chem. 1994. Vol. 18. P. 267–289. DOI:https://doi.org/10.1007/BF00696783.
12. Kucherskoy S.A., Alikbaeva L.A. In vivo toxicity study of dialkyl disulphides // Extrem. Med. Sci. Practic. Rev. J. FMBA Rus. 2021. № 2. DOI:https://doi.org/10.47183/mes.2021.015.
13. Livanova A.A., Zavirsky A.V., Kravtsov V.Yu. Danio rerio as an Experimental Model in Radiobiology // Rad. Boil. Radioecol. 2020. Vol. 60. № 2. P. 163–174. DOI:https://doi.org/10.31857/S0869803120020095.
14. Mahmoud M.A. A., Tybussek T., Loos H.M., Wagenstaller M., Buettner A. Odorants in Fish Feeds: A Potential Source of Malodors in Aquaculture // Front. Chem. 2018. Vol. 6. Art. 241. DOI:https://doi.org/10.3389/fchem.2018.00241.
15. Mashkina A.V., Khairulina L.N. Reaction of dimethyl disulfide with thiophene catalyzed by zeolite // Rus. J. Org. Chem. 2015. Vol. 51. № 2. P. 217–220. DOI:https://doi.org/10.1134/S1070428015020141.
16. Morgott D., Lewis C., Bootman J., Banton M. Disulfide oil hazard assessment using categorical analysis and a mode of action determination // Inter. J. Tox. 2014. Vol. 33. Suppl. 1. P. 181S–198S. DOI:https://doi.org/10.1177/1091581813504227.
17. Mulay P.R., Cavicchia P., Watkins S.M., Tovar-Aguilar A., Wiese M., Calvert G.M. Acute illness associated with exposure to a new soil fumigant containing dimethyl disulfide — Hillsborough County, Florida, 2014 // J. Agromedicine. 2016. Vol. 21. № 4. P. 373–379. DOI:https://doi.org/10.1080/1059924X.2016.1211574.
18. Schoelitsz B., Mwingira V., Mboera L.E.G., Beijleveld H., Koenraadt C.J.M. et al. Chemical Mediation of Oviposition by Anopheles Mosquitoes: a Push-Pull System Driven by Volatiles Associated with Larval Stageshttps // Journal of Chemical Ecology. 2020. Vol. 46. P. 397–409. DOI:https://doi.org/10.1007/s10886-020-01175-5.
19. Vandeputte A.G., Reyniers M.-F., Marin G.B. Theoretical Study of the Thermal Decomposition of Dimethyl Disulfide // J. Phys. Chem. A. 2010. Vol. 114. P. 10531–10549. DOI:https://doi.org/10.1021/jp103357z.
20. Why A.M., Choe D.-H., Walton W.E. Identification of Chemicals Associated Gambusia affinis (Cyprinodontiformes: Poeciliidae), and Their Effect on Oviposition Behavior of Culex tarsalis (Diptera: Culicidae) in the Laboratory // J. Med. Entomol. 2021. Vol. 58. № 6. P. 2075–2090. DOI:https://doi.org/10.1093/jme/tjab078.
21. Wu T., Wang M., Wang P., Tian H., Zhan P. Advances in the formation and control methods of undesirable flavors in fish // Foods. 2022. Vol. 11. P. 2504. DOI:https://doi.org/10.3390/foods11162504.
22. Yin F., Grosjean D., Seinfeld J.H. Photooxidation of Dimethyl Sulfide and Dimethyl Disulfide. I: Mechanism Development // J. Atm. Chem. 1990. Vol. 11. P. 309–364. DOI:https://doi.org/10.1007/BF00053780.
