В статье представлены результаты исследований фенотипических свойств бактерий группы псевдомонадного комплекса, выделенных из микрофлоры 57 особей радужной форели Parasalmo mykiss Walbaum, 1792 в возрасте 1+ и 2+, отобранных для планового исследования из водоемов рыбохозяйственного значения, расположенных на территории Карелии. Акцент на фенотипических свойствах выделенных микроорганизмов связан с возрастающей эпизоотической ролью вирулентных штаммов Pseudomonas aureofaciens, Ps. chlororaphis, Ps. fluorescens, Ps. putida и других в развитии инфекционных заболеваний лососевых видов рыб. Выделение, идентификацию и изучение фенотипических признаков выделенных культур псевдомонад выполняли согласно рекомендациям по лабораторной диагностике псевдомнозов рыб. Параллельно, для анализа степени инвазийности, оценивали гемолитическую активность (ГА), а также способность к биопленкообразованию (БПО) и антилизоцимную активность (АЛА) бактерий. Обнаружено, что выделенные фенотипические варианты бактерий псевдомонадного комплекса обладают выраженной инвазийностью, которая в большей степени проявляется в виде гемолитической и антилизоцимной активности.
псевдомонады, фенотипическое разнообразие, инвазийность, микрофлора радужной форели.
1. Басанкина В.М. Эпизоотические особенности аэромоноза рыб в условиях региона Северного Кавказа. Автореф. дисс … канд. вет. наук. Краснодар: ФГБОУ ВО “Кубанский государственный аграрный университет имени И. Т. Трубилина”, 2020. 23 с.
2. Бухарин О.В., Усвяцов Б.Я., Малышкин А.П., Немцева Н.В. Метод определения антилизоцимной активности микроорганизмов // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. 1984. № 2. С. 2728.
3. Гинаятов Н.С. Клинико-патоморфологическая характеристика псевдомоноза осетровых рыб, выращиваемых в установках замкнутого водоснабжения. Автореф. дисс …канд. вет. наук. Краснодар: ФГБОУ ВО “Казанская государственная академия ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана”, 2018. 23 с.
4. Жезмер В.Ю, Галдина Е.А., Кутищева К.В., Лаврова Н.С. Контроль санитарно-бактериологического состояния водной среды в УЗВ // Сб. науч. тр. ВНИИПРХ. Индустриальное рыбоводство в замкнутых системах. М.: ВНИИПРХ, 1991. № 64. С. 1415.
5. Комкова О.П., Образцова А.М., Сидорова Н.А. Антилизоцимная активность Escherichia coli, выделенной на разных этапах естественной циркуляции вида // Ученые записки Петрозаводского государственного университета. 2016. 2, 110113.
6. Методические указания по лабораторной диагностике псевдомнозов рыб / Сб. инструкций по борьбе с болезнями рыб. М.: Отдел маркетинга АМБ-агро. 1998. С. 152160.
7. Маннапова Р.Т. Практикум для выполнения лабораторно-практических работ: учебник. М.: Проспект, 2021. 440 с.
8. Марданова А.М., Кабанов Д.А, Рудакова Н.Л., Шарипова М.Р. Биопленки: основные принципы организации и методы исследования. - Казань: К(П)ФУ, 2016. 42 с.
9. Нижельская Е.И., Полозюк О.Н., Войтенко Л.Г. Диагностика и лечебно-профилактические мероприятия при болезнях рыб: учебное пособие для студентов факультета ветеринарной медицины. Персиановский: Донской ГАУ, 2019. 162 с.
10. Определитель бактерий Берджи. М.: Мир, 1997. 1250 с.
11. Сердюк А.В. Результаты предварительной оценки угрозы инфекционных заболеваний в полярной аквакультуре лососевых // Науч.-техн. пробл. марикультуры в стране: Тез. докл. Всес. конф., 16-20 мая, 1990. Владивосток. 1989. С. 186187.
12. Сидорова Н.А., Обухова Е.С. Антагонистическая активность оригинальных штаммов Pseudomonas alcaligenes и Pseudomonas cichoril // Материалы Всероссийской научно-практической конференции “От микроскопа до нанотехнологий”. Санкт-Петербург: ВМедА, 2013. С. 6162.
13. Altinok I., Kayis S., Capkin, E. Pseudomonas putida infection in rainbow trout // Aquaculture. 2006. № 261. P. 850855.
14. Altinok I., Baltab F., Capkin E., Kayis S. Disease of rainbow trout caused by Pseudomonas luteola // Aquaculture. 2007. № 273. P. 393397.
15. Finck-Barbançon V., Goranson J., Zhu L., Sawa T., Wiener-Kronish J.P. et al. ExoU expression by Pseudomonas aeruginosa correlates with acute cytotoxicity and epithelial injury // Mol. Microbiol. 1997. № 25. P. 547-557.
16. Furushita M., Shiba T., Maeda T., Yahata M., Kaneoka A. et al. Similarity of tetracycline resistance genes isolated from fish farm bacteria to those from clinical isolates // Appl. Environ. Microbiol. 2003. № 69. P. 5336-5342.
17. Hatai K., Egusa S., Nakajima M., Chikahata H. Pseudomonas chlororaphis as a fish pathogen // Bulletin of the Japanese Society of Scientific Fisheries. 1975. № 41(11). Р. 1203.
18. LPSN “List of Prokaryotic names with Standing in Nomenclature” at. https://lpsn.dsmz.de.
19. O'Toole G.A., Kolter R. Initiation of biofilm formation in Pseudomonas fluorescens WCS365 proceeds via multiple, convergent signalling pathways: a genetic analysis. // Mol Microbiol. 1998. Vol. 28. № 3. Р. 449-461.
20. Rojo E. Carbon catabolite repression in Pseudomonas: optimizing metabolic versatility and interactions with the environment // FEMS Microbiol Reu. 2010. Vol. 34. № 5. Р. 658684.
21. Palleroni N.J. The Pseudomonas story // Environ Microbiol. 2010. Vol. 12. № 6. P. 13771383.
22. Puchalka J., Oberhardt M.A., Godinho M., et al. Genome-scale reconstruction and analysis of the Pseudomonas putida KT2440 metabolic network facilitates applications in biotechnology // PLoS Comput Biol. 2008. Vol. 4. № 10. P. 100121.
23. Rhodes G., Huys G., Swings J., McGann P., Hiney M., Smith P. Distribution of oxytetracycline resistance plasmids between Aeromonads in hospital and aquaculture environments: Implication of Tn1721 in dissemination of the tetracycline resistance determinant Tet A // Appl. Environ. Microbiol. 2000. № 66. Р. 3883-3890.
24. Spiers A.J., Buckling A., Rainey P.B. The causes of Pseudomonas diversity // Microbiology. 2000. 146, 23452350.
25. Stepanovic S., Vukovi D., Hola V. Quantification of biofilm in microtiterplates: overview of testing conditions and practical recommendations for assessment of biofilm production by Staphylococci // APMIS. 2007. № 115. Р. 891899.
26. Sоrum H. Antimicrobial drug resistance in fish pathogens // Antimicrobial Resistance in Bacteria of Animal Origin; Aarestrup, F.M.,Ed.; ASM Press: Washington, DC, USA. 2006. Р. 213-238.
27. Wakabayashi H. Egusa S. Characteristics of Pseudomonas sp. From an epizootic of pond-cultured eels (A. japonica) // Bull. Japan Soc. Scient. Fish. 1972. № 38. Р. 577587.
