Методом непрямого конкурентного иммуноферментного анализа в бурых водорослях Fucus vesiculosus Linnaeus, Fucus serratus Linnaeus, Ascophyllum nodosum (Linnaeus) Le Jolis и Saccharina latissima (Linnaeus) C.E. Lane, C. Mayes, Druehl & G.W. Saunders, отобранных с естественного субстрата и из штормовых выбросов в одном из экотопов Кандалакшского залива Белого моря, проведена сравнительная оценка содержания низкомолекулярных метаболитов, свойственных микромицетам родов Fusarium Link, Alternaria Nees, Penicillium Link, Aspergillus P. Micheli ex Haller, Myrothecium Tode, Cladosporium Link и ряду других. В живых талломах F. vesiculosus, F. serratus, A. nodosum были детектированы все анализированные вещества – Т-2 токсин, диацетоксисцирпенол, дезоксиниваленол, зеараленон, фумонизины, альтернариол, охратоксин А, цитринин, PR-токсин, микофеноловая кислота, афлатоксин В1, стеригматоцистин, циклопиазоновая кислота, эмодин, роридин А и эргоалкалоиды. В образцах из выбросов профиль микотоксинов претерпел значительные изменения. У F. vesiculosus и F. serratus резко и единообразно уменьшилось их содержание и, как следствие, понизилась частота выявления – до 8% и 15%. У A. nodosum обнаружены только альтернариол, афлатоксин В1 и микофеноловая кислота и лишь в 17% образцов вблизи пределов определения метода, а остальные компоненты комплекса найти не удалось. В живых талломах S. latissima анализированные микотоксины отсутствовали, а из выбросов часть образцов имела слабую контаминацию микофеноловой кислотой и эмодином.
макроводоросли, Fucus, Ascophyllum, Saccharina, штормовые выбросы, микотоксины, иммуноферментный анализ.
1. Бубнова Е.Н., Киреев Я.В. Сообщества грибов на талломах бурых водорослей рода Fucus в Кандалакшском заливе Белого моря // Микология и фитопатология. 2009. Т. 43. Вып. 5. С. 388-397.
2. Буркин А.А., Кононенко Г.П., Георгиев А.А., Георгиева М.Л. Особенности накопления микотоксинов в макрофитах Белого моря // Современная микология в России. 2020. Т. 8. С. 100-102.
3. Возжинская В.Б. Беломорские фукоиды, их распределение, биология развития, продукция // Основы биологической продуктивности океана и ее использование. М.: Издательство “Наука”, 1971. С. 172-182.
4. Коновалова О.П., Бубнова Е.Н. Грибы на бурых водорослях Ascophyllum nodosum и Pelvetia canaliculata в Кандалакшском заливе Белого моря // Микология и фитопатология. 2011. Т. 45. Вып. 3. С. 240-248.
5. Коновалова О.П., Бубнова Е.Н., Сидорова И.И. Биология Stigmidium ascophylli - гриба-симбионта фукусовых водорослей в Кандалакшском заливе Белого моря // Микология и фитопатология. 2012. Т. 46. Вып. 6. С. 353-360.
6. Максимова О.В., Мюге Н.С. Новые для Белого моря формы фукоидов (Fucales, Phaeophyceae): морфология, экология, происхождение // Ботанический журнал. 2007. Т. 92, № 7. С. 965-986.
7. Andreev V.P., Plakhotskaya Z.V. Comparative analysis of copper and cadmium accumulation by macrophytes of the Chupa inlet, Kandalaksha Bay, White Sea // Inland Water Biology. 2019. Vol. 12. № 1. P. 124-127. DOI:https://doi.org/10.1134/S1995082919010024
8. Bubnova E.N., Konovalova O.P., Grum-Grzhimaylo O.A., Marfenina O.E. Fifty years of mycological studies at the White Sea Biological Station of Moscow State University: Challenges, results, and outlook // Moscow University Biological Sciences Bulletin. 2014. Vol. 69. № 1. P. 23-39. DOI:https://doi.org/10.3103/S009639254010039
9. Bubnova E.N. Two marine fungi new for the White Sea // Moscow University Biological Sciences Bulletin. 2016. Vol. 71. № 4. P. 218-221. DOI:https://doi.org/10.3103/S0096392516040039
10. Burkin A.A., Kononenko G.P. Producers of mycophenolic acid in ensiled and grain feeds // Applied Biochemistry and Microbiology. 2010. Vol. 46. № 5. P. 545-550. DOI:https://doi.org/10.1134/S0003683810050145
11. Burkin A.A., Kononenko G.P., Georgiev A.A., Georgieva M.L. Toxic metabolites of micromycetes in brown algae of the families Fucaceae and Laminariaceae from the White Sea // Russ. J. Mar. Biol. 2021. Vol. 47. № 1. P. 35-38. DOI:https://doi.org/10.1134/S1063074021010028
12. Christiansen J.V., Isbrandt T., Petersen C., Sondergaard T.E., Nielsen M.R., Pedersen T.B., Sorensen J.L., Larsen T.O., Frisvad J.C. Fungal quinones: diversity, producers, and application of quinones from Aspergillus, Penicillium, Talaromyces, Fusarium, and Arthrinium // Applied Microbiology and Biotechnology. 2021. Vol. 105. P. 8157-8193. DOI:https://doi.org/10.1007/s00253-021-11597-0
13. Hathout A. S., Aly S.E. Biological detoxification of mycotoxins: A review // Annals of Microbiology. 2014. Vol. 64. № 3. P. 905-919. DOI:https://doi.org/10.1007/s13213-014-0899-7
14. Ji C., Fan Y., Zhao L. Review on biological degradation of mycotoxins // Animal Nutrition, 2016. № 2. P. 127-133. DOI:https://doi.org/10.1016/j.aninu.2016.07.003
