Transactions of Papanin Institute for Biology of Inland Waters RAS Transactions of Papanin Institute for Biology of Inland Waters RAS Труды Института биологии внутренних вод имени И.Д. Папанина Российской академии наук 0320-3557 2712-8377 91612 10.47021/0320-3557-2024-18-29 Без рубрики Without rubric Без рубрики INFLUENCE OF ELECTROMAGNETIC FIELD AND THERMAL STRESS ON PHYSIOLOGICAL AND BIOCHEMICAL PARAMETERS OF JUVENILE CRUCIAN CARP CARASSIUS GIBELIO WITH DIFFERENT MERCURY CONTENT ВЛИЯНИЕ ЭЛЕКТРОМАГНИТНОГО ПОЛЯ И ТЕРМАЛЬНОГО СТРЕССА НА ФИЗИОЛОГО-БИОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ МОЛОДИ КАРАСЯ CARASSIUS GIBELIO С РАЗНЫМ СОДЕРЖАНИЕМ РТУТИ Филиппов Андрей Андреевич Filippov Andrey Andreevich andron@ibiw.yaroslavl.ru Голованова Ирина Леонидовна Golovanova Irina Leonidovna golovanova5353@mail.ru Куливатская Е. А. Kulivatskaya E. A. Подгорная В. А. Podgornaya V. A. Смирнов Алексей Константинович Smirnov Alexey Konstantinovich Smirnov@ibiw.yaroslavl.ru Чуйко Г. М. Chuyko G. M. Крылов Вячеслав Владимирович Krylov Vyacheslav Vladimirovich kryloff@ibiw.yaroslavl.ru Котиков Д. Е. Kotikov D. E. Комов Виктор Трофимович Komov Viktor Trofimovich Институт биологии внутренних вод им. И. Д. Папанина Российской академии наук ru Institute of Biology of Inland Waters named after I. D. Papanin, Russian Academy of Sciences ru Институт биологии внутренних вод им. И. Д. Папанина Российской академии наук ru I. D. Papanin Institute of Biology of Inland Waters, Russian Academy of Sciences ru Институт биологии внутренних вод им. И. Д. Папанина Российской академии наук ru Institute of Biology of Inland Waters named after I. D. Papanin, Russian Academy of Sciences ru Институт биологии внутренних вод им. И. Д. Папанина Российской академии наук ru Institute of Biology of Inland Waters named after I. D. Papanin, Russian Academy of Sciences ru Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук Борок Россия Papanin Institute for Biology of Inland Waters Russian Academy of Sciences Borok Russian Federation 13 01 2025 13 01 2025 107 18 29 05 07 2024 20 07 2024 https://ibiw.editorum.ru/en/nauka/article/91612/view

Исследовано влияние кратковременного воздействия низкочастотного электромагнитного поля (50Гц, 10 мкТл) и термального стресса (нагрев воды со скоростью 8°C/ч) на амилолитическую (АА) и протеолитическую (ПА) активность, активность мальтазы (АМ) в кишечнике, а также активность ацетилхолинэстеразы (АХЭ) и содержание водорастворимого белка (ВРБ) в мозге у молоди карася Carassius gibelio, в течение 2 мес. получавшего корм с низким (НСР) 0.07 мг/кг и высоким (ВСР) 0.182 мг/кг сырой массы содержанием ртути. Содержание ртути в мышцах рыб ВСР группы (0.40 и 0.66 мг/кг) было примерно в 2 раза выше по сравнению с НСР группой (0.22 и 0.30 мг/кг) через 1 и 2 мес. соответственно. Через 2 мес. опыта АА увеличилась на 30–48%, ПА снизилась на 30% лишь в ВСР группе, при этом статистически значимых различий у рыб НСР и ВСР групп не выявлено. Уровень АМ был выше на 77% (НСР) и на 340% (ВСР) по сравнению с 1-ым месяцем, при этом он был выше на 36% в ВСР, чем в НСР группе. Изменений активности АХЭ как в разные месяцы, так и между НСР и ВСР группами не выявлено. Содержание ВРБ было на 40% ниже у рыб НСР группы во 2-ой по сравнению с 1-ым месяцем. Последующий температурный стресс (Т) снижал АА и ПА, электромагнитное поле (ЭМП) и его сочетание с Т, как правило, повышало активность этих ферментов у рыб обеих групп. Снижение активности АХЭ (ЭМП+Т) и ВРБ (Т) выявлено лишь у рыб ВСР группы. В целом, ртуть, поступающая с кормом, повышает активность исследованных пищеварительных ферментов, но не влияет на активность АХЭ в мозге, а содержание ВРБ снижает только в 1-й месяц. Последующий температурный стресс и действие ЭМП могут изменять величину и направленность эффекта. Полученные результаты важны при оценке экологических рисков хронического действия ртути в зонах термального и электромагнитного загрязнения водоемов.

The effect of short-term exposure to a low-frequency electromagnetic field (50 Hz, 10 μT) and thermal stress (water heating at a rate of 8 °C/h) on amylolytic (AA) and proteolytic (PA) activities, and maltase (AM) activity in the intestine, as well as acetylcholinesterase (AChE) activity and water-soluble protein (WSP) content in the brain of juvenile crucian carp Carassius gibelio fed a diet for 2 months with low (LMC; 0.07 mg/kg wet weight) and high (HMC; 0.182 mg/kg w.w) mercury were studied. The mercury content in the fish muscles of the HMC group (0.40 and 0.66 mg/kg) was approximately 2 times higher compared to the LMC group (0.22 and 0.30 mg/kg) after 1st and 2nd months of exposure, respectively. After 2 months of the experiment, AA increased by 30-48%, PA decreased by 30% only in the HMC group, while statistically significant differences were not revealed in the fish of the LMC and HMC groups. At this time AM levels were 77% (LMC) and 340% (HMC) higher compared to their values after 1st month, and simultaneously it was 36% higher in the HMC group than in the LMC group. No. changes in AChE activity were revealed either in different months or between the LMC and HMC groups. The WSP content was 40% lower in the fish of the LMC group in the 2nd month compared to the 1st month. Subsequent temperature stress (T) decreased AA and PA, electromagnetic field (EMF) and its combination with T, as a rule, increased the activity of these enzymes in fish of both groups. A decrease in the activity of AChE (EMF+T) and WSP (T) was found only in fish of the HMC group. In general, mercury entering with food increases the activity of the studied digestive enzymes, but does not affect the brain AChE activity and WSP content decreases only in the 1st month. Subsequent temperature stress and the action of EMF can change the magnitude and direction of the effect. The obtained results are important for assessing the environmental risks of chronic mercury exposure in areas of thermal and electromagnetic pollution of water bodies.

 карась пищеварительные ферменты кишечник ацетилхолинэстераза водорастворимый белок мозг ртуть биоаккумуляция электромагнитное поле температурный стресс crucian carp digestive enzymes intestine acetylcholinesterase water-soluble protein brain mercury bioaccumulation electromagnetic field temperature stress Работа выполнена в рамках государственного задания № 124032500018-8.

Голованов В.К. Температурные критерии жизнедеятельности пресноводных рыб. М.: Полиграф-Плюс, 2013. 300 с. Golovanov V.K. Temperaturnye kriterii zhiznedeyatel'nosti presnovodnyh ryb. M.: Poligraf-Plyus, 2013. 300 s. Горбатенко К.М., Лаженцев А.Е. Биохимический состав и калорийность минтая // Изв. ТИНРО. 2016. Т. 184. С. 93–104. Gorbatenko K.M., Lazhencev A.E. Biohimicheskiy sostav i kaloriynost' mintaya // Izv. TINRO. 2016. T. 184. S. 93–104. Кузьмина В.В. Процессы пищеварения у рыб. Новые факты и гипотезы: монография / Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН. Ярославль: Филигрань, 2018. 300 с. Kuz'mina V.V. Processy pischevareniya u ryb. Novye fakty i gipotezy: monografiya / Institut biologii vnutrennih vod im. I.D. Papanina RAN. Yaroslavl': Filigran', 2018. 300 s. Макеева А.В., Ключко Н.Ю. Исследования по совершенствованию рецептуры формованных мороженых полуфабрикатов из речного окуня Perca fluviatilis повышенной биологической ценности // Известия КГТУ. 2021. № 60. C. 97–110. DOI: 10.46845/1997-3071-2021-60-97-110. Makeeva A.V., Klyuchko N.Yu. Issledovaniya po sovershenstvovaniyu receptury formovannyh morozhenyh polufabrikatov iz rechnogo okunya Perca fluviatilis povyshennoy biologicheskoy cennosti // Izvestiya KGTU. 2021. № 60. C. 97–110. DOI: 10.46845/1997-3071-2021-60-97-110. Уголев А.М., Иезуитова Н.Н., Масевич Ц.Г., Надирова Т.Я., Тимофеева Н.М. Исследование пищеварительного аппарата у человека. Обзор современных методов. Л.: Наука. 1969. 216 с. Ugolev A.M., Iezuitova N.N., Masevich C.G., Nadirova T.Ya., Timofeeva N.M. Issledovanie pischevaritel'nogo apparata u cheloveka. Obzor sovremennyh metodov. L.: Nauka. 1969. 216 s. Amlund H., Lundebye A.K., Berntssen M.H.G. Accumulation and elimination of methylmercury in Atlantic cod (Gadus morhua L.) following dietary exposure // Aquat. Toxicol. 2007. Vol. 83, № 4. P. 323–330. DOI: 10.1016/j.aquatox.2007.05.008. Amlund H., Lundebye A.K., Berntssen M.H.G. Accumulation and elimination of methylmercury in Atlantic cod (Gadus morhua L.) following dietary exposure // Aquat. Toxicol. 2007. Vol. 83, № 4. P. 323–330. DOI: 10.1016/j.aquatox.2007.05.008. Beitinger T.L., Bennett W.A., McCauley R.W. Temperature Tolerances of North American Freshwater Fishes Exposed to Dynamic Changes in Temperature // Environ. Biol. Fish. 2000. Vol. 58. P. 237–275. DOI: 10.1023/A:1007676325825. Beitinger T.L., Bennett W.A., McCauley R.W. Temperature Tolerances of North American Freshwater Fishes Exposed to Dynamic Changes in Temperature // Environ. Biol. Fish. 2000. Vol. 58. P. 237–275. DOI: 10.1023/A:1007676325825. Berntssen M.H.G., Hylland K., Julshamn K. Lundebye A.-K., Waagbo R. Maximum limits of organic and inorganic mercury in fish feed // Aquaculture Nutrition. 2004. Vol. 10. P. 83–97. DOI: 10.1046/j.1365-2095.2003.00282.x. Berntssen M.H.G., Hylland K., Julshamn K. Lundebye A.-K., Waagbo R. Maximum limits of organic and inorganic mercury in fish feed // Aquaculture Nutrition. 2004. Vol. 10. P. 83–97. DOI: 10.1046/j.1365-2095.2003.00282.x. Bloom N.S. On the chemical form of mercury in edible fish and marine invertebrate tissues // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1992. Vol. 49. P. 1010–1017. DOI: 10.1139/f92-113. Bloom N.S. On the chemical form of mercury in edible fish and marine invertebrate tissues // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1992. Vol. 49. P. 1010–1017. DOI: 10.1139/f92-113. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principal of protein-dye binding // Anal. Biochem. 1976. Vol. 72. P. 248–254. DOI: 10.1006/abio.1976.9999. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principal of protein-dye binding // Anal. Biochem. 1976. Vol. 72. P. 248–254. DOI: 10.1006/abio.1976.9999. Chang, L. W. Neurotoxic effects of mercury (A review) // Environmental Research. 1977. Vol. 14(3). P. 329–373. DOI: 10.1016/0013-9351(77)90044-5. Chang, L. W. Neurotoxic effects of mercury (A review) // Environmental Research. 1977. Vol. 14(3). P. 329–373. DOI: 10.1016/0013-9351(77)90044-5. Chuiko G.M., Podgornaya V.A., Zhelnin Y.Y. Acetylcholinesterase and butyrylcholinesterase activities in brain and plasma of freshwater teleosts: cross-species and cross-family differences // Comp. Biochem. Physiol. 2003. Vol. 135B, № 1. P. 55–61. DOI: 10.1016/s1096-4959(03)00048-4. Chuiko G.M., Podgornaya V.A., Zhelnin Y.Y. Acetylcholinesterase and butyrylcholinesterase activities in brain and plasma of freshwater teleosts: cross-species and cross-family differences // Comp. Biochem. Physiol. 2003. Vol. 135B, № 1. P. 55–61. DOI: 10.1016/s1096-4959(03)00048-4. Ellman G.L., Courtney K.D., Andres V., Featherstone R.M. A new and rapid colorimetric determination of acetylcholi-nesterase activity // Biochem. Pharmacol. 1961. Vol. 70, № 2. P. 88–90. DOI: 10.1016/0006-2952(61)90145-9. Ellman G.L., Courtney K.D., Andres V., Featherstone R.M. A new and rapid colorimetric determination of acetylcholi-nesterase activity // Biochem. Pharmacol. 1961. Vol. 70, № 2. P. 88–90. DOI: 10.1016/0006-2952(61)90145-9. Farina M., Avila D.S., da Rocha J.B.T., Aschner M. Metals, oxidative stress and neurodegeneration: a focus on iron, manganese and mercury // Neurochem. Int. 2013. Vol. 62. P. 575–594. DOI: 10.1016/j.neuint.2012.12.006 Farina M., Avila D.S., da Rocha J.B.T., Aschner M. Metals, oxidative stress and neurodegeneration: a focus on iron, manganese and mercury // Neurochem. Int. 2013. Vol. 62. P. 575–594. DOI: 10.1016/j.neuint.2012.12.006 Frasco M.F., Colletier J.-P., Weik M., Carvalho F., Guilhermino L., Stojan J., Fournier D. Mechanisms of cholinesterase inhibition by inorganic mercury // FEBS Journal. 2007. Vol. 274(7), 1849–1861. DOI: 10.1111/j.1742-4658.2007.05732.x. Frasco M.F., Colletier J.-P., Weik M., Carvalho F., Guilhermino L., Stojan J., Fournier D. Mechanisms of cholinesterase inhibition by inorganic mercury // FEBS Journal. 2007. Vol. 274(7), 1849–1861. DOI: 10.1111/j.1742-4658.2007.05732.x. Garina D.V. Influence of chronic intake of small doses of mercury on some biochemical parameters of lipid and protein metabolism in goldfish Carassius auratus (L., 1758) // Ecosystem Transformation. 2023. Vol. 6, № 3. P. 86–104. DOI: 10.23859/estr-220505. Garina D.V. Influence of chronic intake of small doses of mercury on some biochemical parameters of lipid and protein metabolism in goldfish Carassius auratus (L., 1758) // Ecosystem Transformation. 2023. Vol. 6, № 3. P. 86–104. DOI: 10.23859/estr-220505. Golovanova I.L., Filippov A.A., Chebotareva Yu.V., Krylov V.V. Long-Term Consequences of the Effect of Copper and an Electromagnetic Field on the Size and Weight Parameters and Activity of Digestive Glycosidases in Underyearlings of Roach Rutilus rutilus // Inland Water Biol. 2021. Vol. 14, № 3. P. 331–339. DOI: 10.1134/S1995082921020048. Golovanova I.L., Filippov A.A., Chebotareva Yu.V., Krylov V.V. Long-Term Consequences of the Effect of Copper and an Electromagnetic Field on the Size and Weight Parameters and Activity of Digestive Glycosidases in Underyearlings of Roach Rutilus rutilus // Inland Water Biol. 2021. Vol. 14, № 3. P. 331–339. DOI: 10.1134/S1995082921020048. Golovanova I.L., Golovanov V.K., Chuiko G.M., Podgornaia V.A., Aminov A.I. Effects of Roundup herbicide at low concentration and of thermal stress on physiological and biochemical parameters in Amur sleeper Perccottus glenii Dybowski juveniles // Inland Water Biol. 2019. № 4. P. 462–469. DOI: 10.1134/S1995082919040059. Golovanova I.L., Golovanov V.K., Chuiko G.M., Podgornaia V.A., Aminov A.I. Effects of Roundup herbicide at low concentration and of thermal stress on physiological and biochemical parameters in Amur sleeper Perccottus glenii Dybowski juveniles // Inland Water Biol. 2019. № 4. P. 462–469. DOI: 10.1134/S1995082919040059. Golovanova I.L., Komov V.T. Impact of Mercury on Hydrolysis of Carbohydrates in the Intestine of the River Perch Perca fluviatilis // J. Ichthyology. 2005. Vol. 45. № 8. P. 663–668. Golovanova I.L., Komov V.T. Impact of Mercury on Hydrolysis of Carbohydrates in the Intestine of the River Perch Perca fluviatilis // J. Ichthyology. 2005. Vol. 45. № 8. P. 663–668. Golovanova I.L., Komov V.T., Gremyatchikh V.A. Hydrolysis of Carbohydrates in Roach (Rutilus rutilus L.) at Different Levels of Mercury Accumulation // Inland Water Biol. 2008. Vol. 1. № 3. P. 296–302. DOI: 10.1134/S1995082908030140. Golovanova I.L., Komov V.T., Gremyatchikh V.A. Hydrolysis of Carbohydrates in Roach (Rutilus rutilus L.) at Different Levels of Mercury Accumulation // Inland Water Biol. 2008. Vol. 1. № 3. P. 296–302. DOI: 10.1134/S1995082908030140. Grippo M.A., Heath A.G. The effect of mercury on the feeding behavior of fathead minnows (Pimephales promelas) // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2003. Vol. 55. P. 187–198. DOI: 10.1016/S0147-6513(02)00071-4. Grippo M.A., Heath A.G. The effect of mercury on the feeding behavior of fathead minnows (Pimephales promelas) // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2003. Vol. 55. P. 187–198. DOI: 10.1016/S0147-6513(02)00071-4. Haines T.A., Komov V.T., Matey V.E., Jagoe C.H. Perch mercury content is related to acidity and color of 26 Russian lakes // Water Air Soil Pollut. 1995. Vol. 85. P. 823–828. DOI: 10.1007/BF00476931. Haines T.A., Komov V.T., Matey V.E., Jagoe C.H. Perch mercury content is related to acidity and color of 26 Russian lakes // Water Air Soil Pollut. 1995. Vol. 85. P. 823–828. DOI: 10.1007/BF00476931. Hall B.D., Bodaly R.A., Furge R.J.P., Rudd J.W.M., Rosenberg D.M. Food as the dominant pathway of methylmercury uptake by fish // Water Air Soil Pollut. 1997. Vol. 100. P. 13–24. DOI: 10.1023/A:1018071406537. Hall B.D., Bodaly R.A., Furge R.J.P., Rudd J.W.M., Rosenberg D.M. Food as the dominant pathway of methylmercury uptake by fish // Water Air Soil Pollut. 1997. Vol. 100. P. 13–24. DOI: 10.1023/A:1018071406537. Kuz’mina V.V., Komov V.T., Gremyachikh V.A., Rusanova P.V. Activity of Digestive Hydrolases in Carp Cyprinus carpio with Different Mercury Content in Food // J. Ichthyol. 2013. Vol. 53, №. 4. P. 301–309. DOI: 10.7868/S0042875213020082. Kuz’mina V.V., Komov V.T., Gremyachikh V.A., Rusanova P.V. Activity of Digestive Hydrolases in Carp Cyprinus carpio with Different Mercury Content in Food // J. Ichthyol. 2013. Vol. 53, №. 4. P. 301–309. DOI: 10.7868/S0042875213020082. Kuz’mina V.V., Skvortsova E.G., Pivovarova E.A., Bushkareva A.S., Vostrova U.A., Poltoratskaya A.V. Influence of sapropel on the activity of intestinal peptidases of broiler chickens // J. Indonesian Trop. Anim. Agric. 2021. Vol. 46, № 1. P. 67–74. DOI: 10.14710/jitaa.46.1.67-74. Kuz’mina V.V., Skvortsova E.G., Pivovarova E.A., Bushkareva A.S., Vostrova U.A., Poltoratskaya A.V. Influence of sapropel on the activity of intestinal peptidases of broiler chickens // J. Indonesian Trop. Anim. Agric. 2021. Vol. 46, № 1. P. 67–74. DOI: 10.14710/jitaa.46.1.67-74. Kuz’mina V.V., Ushakova N.V., Krylov V.V. The Effect of Magnetic Fields on the Activity of Proteinases and Glycosidases in the Intestine of the Crucian Carp Carassius carassius // Biology Bulletin. 2015. Vol. 42, № 1. P. 61–66. DOI: 10.1134/S1062359015010070. Kuz’mina V.V., Ushakova N.V., Krylov V.V. The Effect of Magnetic Fields on the Activity of Proteinases and Glycosidases in the Intestine of the Crucian Carp Carassius carassius // Biology Bulletin. 2015. Vol. 42, № 1. P. 61–66. DOI: 10.1134/S1062359015010070. Li Z.-H., Li P., Wu Y. Effects of waterborne mercury at different temperatures on hematology and energy metabolism in grass carp (Ctenopharyngodon idella) // Int. J. of Environ. Sci. and Tech. 2021. Vol. 18, № 6. P. 1489–1498. DOI: 10.1007/s13762-020-02906-7. Li Z.-H., Li P., Wu Y. Effects of waterborne mercury at different temperatures on hematology and energy metabolism in grass carp (Ctenopharyngodon idella) // Int. J. of Environ. Sci. and Tech. 2021. Vol. 18, № 6. P. 1489–1498. DOI: 10.1007/s13762-020-02906-7. Melakea B.A., Endalewa S.M., Alamerewa T.S. Bioaccumulation of Perfluoroalkyl Substances and Mercury in Fish Tissue: A Global Systematic Review // J. Polymer Sci. 2023. Vol. 8, № 2. P. 21–25. DOI: 10.36648/2471-9935.23.8.011. Melakea B.A., Endalewa S.M., Alamerewa T.S. Bioaccumulation of Perfluoroalkyl Substances and Mercury in Fish Tissue: A Global Systematic Review // J. Polymer Sci. 2023. Vol. 8, № 2. P. 21–25. DOI: 10.36648/2471-9935.23.8.011. Nunes B. The Use of Cholinesterases in Ecotoxicology // Reviews of Environmental Contamination and Toxicology. 2011. Vol. 212. P. 29–59. DOI: 10.1007/978-1-4419-8453-1_2. Nunes B. The Use of Cholinesterases in Ecotoxicology // Reviews of Environmental Contamination and Toxicology. 2011. Vol. 212. P. 29–59. DOI: 10.1007/978-1-4419-8453-1_2. Pereira P., Puga S., Cardoso V., Pinto-Ribeiro F., Raimundo J., Barata M., Pousгo-Ferreira P., Pacheco M., Almeida A. Inorganic mercury accumulation in brain following waterborne exposure elicits a deficit on the number of brain cells and impairs swimming behavior in fish (white seabream-Diplodus sargus) // Aquat. Toxicol. 2016. Vol. 170. P. 400–412. DOI: 10.1016/j.aquatox.2015.11.031. Pereira P., Puga S., Cardoso V., Pinto-Ribeiro F., Raimundo J., Barata M., Pousgo-Ferreira P., Pacheco M., Almeida A. Inorganic mercury accumulation in brain following waterborne exposure elicits a deficit on the number of brain cells and impairs swimming behavior in fish (white seabream-Diplodus sargus) // Aquat. Toxicol. 2016. Vol. 170. P. 400–412. DOI: 10.1016/j.aquatox.2015.11.031. Rodgers D.W., Beamish F.W.H. Dynamics of dietary methylmercury in rainbow trout, Salmo gairdneri // Aquat. Toxicol. 1982. Vol. 2. P. 271–290. Rodgers D.W., Beamish F.W.H. Dynamics of dietary methylmercury in rainbow trout, Salmo gairdneri // Aquat. Toxicol. 1982. Vol. 2. P. 271–290. Schartup A.T., Thackray C.P., Qureshi A., Dassuncao C., Gillespie K., Hanke A., Sunderland E. M. Climate change and overfishing increase neurotoxicant in marine predators // Nature. 2019. Vol. 572. P. 648–650. DOI: 10.1038/s41586-019-1468-9. Schartup A.T., Thackray C.P., Qureshi A., Dassuncao C., Gillespie K., Hanke A., Sunderland E. M. Climate change and overfishing increase neurotoxicant in marine predators // Nature. 2019. Vol. 572. P. 648–650. DOI: 10.1038/s41586-019-1468-9. Sokolova I.M., Lannig G. Interactive effects of metal pollution and temperature on metabolism in aquatic ectotherms: implications of global climate change // Clim. Res. 2008. Vol. 37. P. 181–201. DOI: 10.3354/cr00764. Sokolova I.M., Lannig G. Interactive effects of metal pollution and temperature on metabolism in aquatic ectotherms: implications of global climate change // Clim. Res. 2008. Vol. 37. P. 181–201. DOI: 10.3354/cr00764. Webber H.M., Haines T.A. Mercury effects on predator avoidance behavior of a forage fish, golden shiner (Notemigonus crysoleucas) // Environ. Toxicol. Chem. 2003. Vol. 22, № 7. P. 1556–1561. DOI: 10.1002/etc.5620220718. Webber H.M., Haines T.A. Mercury effects on predator avoidance behavior of a forage fish, golden shiner (Notemigonus crysoleucas) // Environ. Toxicol. Chem. 2003. Vol. 22, № 7. P. 1556–1561. DOI: 10.1002/etc.5620220718. Zhou T., Scali R., Weis P., Weis J.S. Behavioral effects in mummichog larvae (Fundulus heteroclitus) following embryonic exposure to methylmercury // Mar. Environ. Res. 1996. Vol. 42. P. 45–49. Zhou T., Scali R., Weis P., Weis J.S. Behavioral effects in mummichog larvae (Fundulus heteroclitus) following embryonic exposure to methylmercury // Mar. Environ. Res. 1996. Vol. 42. P. 45–49.